JP2021513508A - 抗がんマイクロrna及びその脂質製剤 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明者らは、驚くべきことに、ジアミノ脂質を含むナノ粒子製剤がすぐれた結果をもたらすことを見出した。したがって、本発明の第1の態様は、ナノ粒子を含む組成物であって、ナノ粒子が、ジアミノ脂質及びそのmiRNA、antagomiR、又はソースを含み、
i)miRNA又はantagomirは、miRNA分子、isomiR、又はその模倣体であり、抗がんmiRNA、好ましくは、配列番号17〜50で表されるシード配列の7ヌクレオチドのうちの少なくとも6つを含むシード配列を有するオリゴヌクレオチドであるか、又はそのantagomirであり、前記miRNA又はantagomirは、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、miRNA−7、miRNA−135a、miRNA−135b、及びmiRNA−196a、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から好ましくは選択され、
ii)ジアミノ脂質は、一般式(I)
nは、0、1、又は2であり、
T1、T2、及びT3は、それぞれ独立して、任意選択で不飽和であり、0、1、2、3、又は4つの置換基を有するC10〜C18鎖であり、置換基は、C1〜C4アルキル、C1〜C4アルケニル、及びC1〜C4アルコキシからなる群から選択される)
のものである、組成物を提供する。
本発明によるナノ粒子は、一般式(I)のジアミノ脂質を含むが、脂質をさらに含んでもよい。好ましい実施形態では、ジアミノ脂質は、モルパーセントで、ナノ粒子中に最も蔓延している。本明細書で使用される場合、脂質という用語は、非極性溶媒に可溶性である物質を指す。本発明において使用されるジアミノ脂質は、スペーサーに連結した3つのテイルを有し、よって、天然に存在するトリグリセリド脂質に似ている。いくつかのこのような脂質が公知である(米国特許第8691750号)。
i)miRNA又はantagomirが、miRNA分子、isomiR、又はその模倣体であり、配列番号17〜50によって表されるシード配列の7ヌクレオチドのうちの少なくとも6つを含むシード配列を有するオリゴヌクレオチドであるか、又はそのantagomirであり、前記miRNA又はantagomirが、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から選択され、
ii)ジアミノ脂質が、一般式(I−1)
のものである、組成物を提供する。
好ましい実施形態では、前記抗がんmiRNA又はantagomirは、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、miRNA−135a、miRNA−135b、及びmiRNA−196a、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から選択される。より好ましい実施形態では、前記miRNA又はantagomirは、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から選択される。他のより好ましい実施形態では、前記miRNA又はantagomirは、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−3157、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から選択される。他のより好ましい実施形態では、前記miRNA又はantagomirは、miRNAであり、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−3157、又はそのisomiR、又はその模倣体、又はそのantagomirからなる群から選択される。
i)miRNA−323−5p分子、miRNA−323−5p isomiR、若しくはmiRNA−323−5p模倣体、又は
ii)miRNA−342−5p分子、miRNA−342−5p isomiR、若しくはmiRNA−324−5p模倣体、又は
iii)miRNA−520f−3p分子、miRNA−520f−3p isomiR、若しくはmiRNA−520f−3p模倣体、又は
iv)miRNA−520f−3p−i3分子、miRNA−520f−3p−i3 isomiR、若しくはmiRNA−520f−3p−i3模倣体、又は
v)miRNA−3157−5p分子、miRNA−3157−5p isomiR、若しくはmiRNA−3157−5p模倣体、又は
vi)miRNA−193a−3p分子、miRNA−193a−3p isomiR、若しくはmiRNA−193a−3p模倣体、又は
vii)miRNA−7−5p分子、miRNA−7−5p isomiR、若しくはmiRNA−7−5p模倣体
である、組成物を提供する。
前記miRNAが、配列番号51〜125、209、211、213、215、217、219、若しくは221のうちのいずれか1つと少なくとも70%の配列同一性を共有する、
及び/又は前記miRNAが、15〜30ヌクレオチド長である、
及び/又はmiRNAの前記ソースが、前記miRNAの前駆体であり、配列番号1〜16のうちのいずれか1つと、好ましくは配列番号1〜8のうちのいずれか1つと少なくとも70%の配列同一性を共有する、組成物を提供する。
i)miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
ii)miRNA−193a、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
iii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
iv)miRNA−193a、miRNA−323、miRNAー342、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
v)miRNA−193a、miRNA−323、miRNAー342、miRNA−520f、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
vi)miRNA−193a、miRNA−323、miRNAー342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
vii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNAー342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−3157、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数、又は
viii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNAー342、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数
をさらに含む組成物を提供する。
i)miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
ii)miRNA−193a、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
iii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
iv)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
v)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
vi)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
vii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、及びmiRNA−3157、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体のうちの1つ若しくは複数、又は
viii)miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−3157、及びmiRNA−7、若しくはそのisomiR、若しくはその模倣体、若しくはそのantagomirのうちの1つ若しくは複数
をさらに含む組成物を提供する。
組成物は、溶媒及び/又は賦形剤、好ましくは薬学的に許容される賦形剤をさらに含むことができる。好ましい溶媒は、薬学的に許容される緩衝液、例えば、PBS又はクエン酸緩衝液などの水性溶液である。好ましいクエン酸緩衝液は、好ましくはNaOHを使用して設定された、pH2.5〜3.5、例えば、pH3の50mMのクエン酸塩を含む。好ましいPBSは、pH7〜8、例えば、pH7.4である。PBSは、二価のカチオン、例えば、Ca2+及びMg2+を含まないのが好ましい。別の好ましい薬学的に許容される賦形剤は、エタノールである。最も好ましくは、組成物は、生理的緩衝液、例えば、PBS又はグッドの緩衝液又はHepes緩衝食塩水又はハンクス平衡塩類溶液又はリンガー平衡塩類溶液又はTris緩衝液を含む。好ましい組成物は、医薬組成物である。
i)水溶性ポリマーが、ポリ(エチレングリコール)(PEG)、ポリ(ヒドロキシエチル−l−アスパラギン)(PHEA)、ポリ−(ヒドロキシエチル−L−グルタミン)(PHEG)、ポリ(グルタミン酸)(PGA)、ポリグリセロール(PG)、ポリ(アクリルアミド)(PAAm)、ポリ(ビニルピロリドン)(PVP)、ポリ(N−(2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド)(PHPMA)、及びポリ(2−オキサゾリン)(POx)、例えば、ポリ(2−メチル−2−オキサゾリン)(PMeOx)及びポリ(2−エチル−2−オキサゾリン)(PEtOx)、又はそのコポリマーからなる群から選択され、
ii)親油性アンカーが、ステロール、脂質、及びビタミンE誘導体からなる群から選択される、組成物を提供する。好ましくは、親油性アンカーは、脂質、より好ましくはジグリセリドである。
i)20〜60モル%のジアミノ脂質、及び
ii)0〜40モル%のリン脂質、及び
iii)30〜70モル%のステロール、好ましくはコレステロール、及び
iv)0〜10モル%の、上で定義された水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲート
を含む、組成物を提供する。
i)25〜55モル%のジアミノ脂質、及び
ii)1〜30モル%のリン脂質、及び
iii)35〜65モル%のステロール、好ましくはコレステロール、及び
iv)0.1〜4モル%の、水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲート
を含む。
i)35〜50モル%のジアミノ脂質、及び
ii)5〜15モル%のリン脂質、及び
iii)40〜60モル%のステロール、好ましくはコレステロール、及び
iv)0.5〜2.5モル%の、水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲート
を含む。
i)約38〜42モル%のジアミノ脂質、及び
ii)約8〜12モル%のリン脂質、及び
iii)約46〜50モル%のステロール、好ましくはコレステロール、及び
iv)約1.8〜2.2モル%の、水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲート
を含む。
本発明は、これらのナノ粒子、及び組成物由来のmiRNAの医学的使用を提供する。したがって、この態様は、医薬品として使用するための、本発明による組成物の使用を提供する。したがって、この態様は、医薬品として使用するための、組成物由来のmiRNAの使用を提供する。この使用は医薬品の製造における、組成物又はmiRNAの使用であってもよい。好ましい実施形態では、本発明による組成物又は組成物由来のmiRNAは、好ましくはがんの処置において、医薬品として使用するためのものである。これは、がんを防止する、処置する、回復させる、治癒させる及び/又は遅延させるための医薬品として使用するためのものであってもよく、言い換えれば、抗腫瘍効果を得るためのものであってもよい。このような使用のための組成物は、以降で、本発明による使用のための組成物と称させる。上記の医学的使用では、組成物由来の好ましいmiRNAは、miRNA−193a又はその模倣体若しくはisomiR若しくは前駆体であり、本発明による好ましい組成物は、miRNA−193a又はその模倣体若しくはisomiR若しくは前駆体を含む。
増殖の阻害又は腫瘍細胞の増殖の検出可能な低下又は腫瘍細胞若しくはメラニン形成細胞の細胞生存率の低下、並びに/或いは
腫瘍細胞の分化能の増加、並びに/或いは
腫瘍細胞の生存の低下と等しい、腫瘍細胞死の増加、並びに/或いは
転移及び/又は腫瘍細胞の移動の発生の遅延、並びに/或いは
腫瘍重量又は成長の増加の阻害又は防止又は遅延、並びに/又は
少なくとも1カ月、数カ月又はそれより長い期間の患者の生存の延長(処置されていないか若しくは対照で処置されたものと比較して、又は処置の開始時の対象と比較して)、並びに/或いは
腫瘍サイズ又は体積の減少
として対象において特定されるのが好ましい。
i)組成物が、好ましくは、miRNA−193a又はその模倣体若しくはisomiR若しくは前駆体を含むか、或いは組成物由来のmiRNAが、miRNA−193a又はその模倣体若しくはisomiR若しくは前駆体である、本発明による組成物又は組成物由来のmiRNA、並びに
ii)
a.VEGF受容体阻害剤などの受容体チロシンキナーゼ阻害剤、例えば、アキシチニブ、セジラニブ、レンバチニブ、ニンテダニブ、パゾパニブ、レゴラフェニブ、セマクサニブ、ソラフェニブ、スニチニブ、チボザニブ、トセラニブ、又はバンデタニブ、好ましくはスンチニブ、ソラフェニブ、又はパゾパニブ、より好ましくはソラフェニブ;
b.プラチナ系細胞周期非特異的抗腫瘍剤、例えば、カルボプラチン、シスプラチン、ジシクロプラチン、ネダプラチン、オキサリプラチン、又はサトラプラチン、好ましくはシスプラチン又はカルボプラチン又はオキサリプラチン;
c.タキサン、例えば、カバジタキセル、ドセタキセル、ラロタキセル、オルタタキセル、パクリタキセル、又はテセタキセル、好ましくはパクリタキセル又はドセタキセル、より好ましくはパクリタキセル又はドセタキセル;
d.ピリミジン系抗代謝薬、例えば、フルオロウラシル、カペシタビン、ドキシフルリジン、テガフール、カルモフール、フロクスウリジン、シタラビン、ゲムシタビン、アザシチジン、又はデシタビン、好ましくはフルオロウラシル又はゲムシタビン又はカペシタビン;
e.ビンカアルカロイド、例えば、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンフルニン、ビンデシン、又はビノレルビン、好ましくはビノレルビン又はビンブラスチン;
f.葉酸抗代謝薬、アミノプテリン、メトトレキサート、ペメトレキセド、プララトレキサート、又はラルチトレキセド、好ましくはペメトレキセド又はメトトレキサート;
g.アントラサイクリン、例えば、アクラルビシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、エピルビシン、イダルビシン、アムルビシン、ピラルビシン、バルルビシン、又はゾルビシン、好ましくはドキソルビシン;
h.非古典的細胞周期非特異的抗腫瘍剤、例えば、プロカルバジン、ダカルバジン、テモゾロミド、アルトレタミン、ミトブロニトール、又はピポブロマン、好ましくはダカルバジン又はテモゾロミド;
i.タキサン、例えば、カバジタキセル、ドセタキセル、ラロタキセル、オルタタキセル、パクリタキセル、又はテセタキセル、好ましくはパクリタキセル、例えば、アルブミン結合パクリタキセル;
j.トポイソメラーゼ阻害剤、例えば、カンプトテシン、コシテカン、ベロテカン、ジマテカン、エキサテカン、イリノテカン、ラルトテカン、シラテカン、トポテカン、ルビテカン、好ましくはイリノテカン;
k.トリフルリジン又はチピラシル、又はトリフルリジンとチピラシルの組合せ;
l.インターカレート架橋剤、例えば、アクチノマイシン、ブレオマイシ、マイトマイシン、プリカマイシン、好ましくはブレオマイシン又はマイトマイシン;
m.アントラセンジオン、例えば、ミトキサントロン又はピクサントロン、好ましくはミトキサントロン;及び
n.アルキル化抗腫瘍剤、例えば、エストロゲン系アルキル化抗腫瘍剤、例えば、アレストラムスチン、アトリムスチン、シテストロールアセテート、エストラジオールマスタード、エストラムスチン、エストロムスチン、スチルボスタット;又はフェネストロール、好ましくはエストラムスチン
からなる群から選択される、少なくとも1つの化学療法剤
を含む。
この文書及びその特許請求の範囲では、動詞「含むこと(to comprise)」及びその活用形は、その語の後に続く項目が含まれることを意味するために非限定的意味で使用されるが、具体的に述べられていない項目を除外するものではない。さらに、不定冠詞「a」又は「an」による要素への言及は、文脈が要素のうちの1つ及び1つだけが存在することを明確に要求していなければ、要素の2つ以上が存在する可能性を除外するものではない。よって、不定冠詞「a」又は「an」は、通常、「少なくとも1つ」を意味する。
マイクロRNA分子(「miRNA」)は、17ヌクレオチド長から最大25ヌクレオチド長であることが報告されているが、一般的には、21〜22ヌクレオチド長である。したがって、17、18、19、20、21、22、23、24、25の任意の長さが本発明に包含される。miRNAはそれぞれ、より長い前駆体RNA分子(「前駆体miRNA」)からプロセシングされる。前駆体miRNAは、非タンパク質コード遺伝子から転写される。前駆体は、少なくとも50、70、75、80、85、100、150、200ヌクレオチド長又はそれより長いヌクレオチド長を有し得る。前駆体miRNAは、動物においてDicer及びDroshaと呼ばれる酵素によって切断される、ステム−ループ−又はフォールド−バック様構造の形成を可能にする2つの相補的な領域を有する。Dicer及びDroshaは、リボヌクレアーゼIII様ヌクレアーゼである。プロセシングされたmiRNAは、典型的には、ステムの一部である。
本発明は、培養細胞に又は対象へとmiRNAを導入することができるmiRNAのソース又は前駆体とも呼ばれる核酸分子に関する。核酸は、化学的合成によって優先的に生成されるが、精製した酵素によって細胞内又はin vitroで生成される場合もある。これらは、粗製であっても又は精製されていてもよい。用語「miRNA」は、別段に示されていなければ、その前駆体から切断された後の、プロセシングされたmiRNAを指す。miRNAの名称は、省略される場合が多く、接頭辞なしで称され、文脈に応じてそのまま理解される。別段に示されていなければ、本出願において言及されるmiRNAは、mir−X又はlet−X(式中、Xは、数値及び/又は文字である)として特定されるヒト配列である。
本明細書で使用される場合、「核酸塩基」は、複素環塩基、例えば、少なくとも1つの天然に存在する核酸(すなわち、DNA及びRNA)に見られる天然に存在する核酸塩基(すなわち、A、T、G、C又はU)、並びにこのような核酸塩基の天然に存在するか又は天然に存在しない誘導体(複数可)及び類似体などを指す。核酸塩基は、一般的に、天然に存在する核酸塩基の対合(例えば、AとT、GとC、及びAとUの間の水素結合)の代わりとなり得る方法で、少なくとも1つの天然に存在する核酸塩基と1つ又は複数の水素結合(「アニーリングする」又は「ハイブリダイズする」)を形成することができる。
本明細書で使用される場合、「ヌクレオシド」は、核酸塩基のリンカー部分に共有結合によって結合された核酸塩基を含む個々の化学的単位を指す。「核酸塩基のリンカー部分」の非制限的な例は、これらに限定されないが、デオキシリボース、リボース、アラビノース、又は5−炭素糖の誘導体若しくは類似体を含む、5−炭素原子を含む糖(すなわち、「5−炭素糖」)である。5−炭素糖の誘導体又は類似体の非制限的な例としては、2’−フルオロ−2’−デオキシリボース又は炭素が糖環中の酸素原子と置換された炭素環糖が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「ヌクレオチド」は、「骨格部分」をさらに含むヌクレオシドを意味する。骨格部分は一般的に、ヌクレオチドを、ヌクレオチドを含む別の分子に、又は別のヌクレオチドに、共有結合により結合させて、核酸を形成する。天然に存在するヌクレオチド中の「骨格部分」は典型的には、5−炭素糖に共有結合により結合されるリン部分を含む。骨格部分の結合は、典型的には、5−炭素糖の3’−位又は5’−位のいずれかにおいて生じる。しかし、他のタイプの結合は、特に、ヌクレオチドが天然に存在する5−炭素糖又はリン部分の誘導体又は類似体を含む場合には、当技術分野で公知である。
核酸は、核酸塩基の誘導体又は類似体、天然に存在する核酸中に存在し得る核酸塩基のリンカー部分及び/又は骨格部分を含むか、又はこれらから完全に構成されてもよい。核酸類似体を有するRNAも、本発明の方法に従って標識され得る。本明細書で使用される場合、「誘導体」は、天然に存在する分子の化学的に修飾されたか又は改変された形態を指し、一方、用語「模倣体」又は「類似体」は、天然に存在する分子又は部分に構造的に似ている場合もあれば似ていない場合もあるが、類似の機能を有する分子を指す。本明細書で使用される場合、「部分(moiety)」は、一般的に、より大きな化学的構造又は分子構造の、より小さな化学的成分又は分子的成分を指す。核酸塩基、ヌクレオシド及びヌクレオチドの類似体又は誘導体は、当技術分野で周知であり、文献に記載されている(例えば、Scheit、1980年を参照されたい)。
1)リボース修飾(2’F、2’ NH2、2’N3,4’チオ、又は2’O−CH3など)及び
2)ホスフェート修飾(ホスホロチオエート、メチルホスホネート、及びホスホロボレートに見られるものなど)
が含まれる。
本発明のmiRNAは、それらの活性を高めるよう修飾されたヌクレオチドの使用を企図する。このようなヌクレオチドは、RNAの5’又は3’末端に存在するもの及び分子内に存在するものを含む。前記miRNAの相補鎖で使用される修飾されたヌクレオチドは、RNAの5’OH若しくはホスフェートをブロックするか又はmiRNAの活性鎖の取込みを促進する内部糖修飾を導入するかのいずれかである。miRNAに関する修飾は、ハイブリダイゼーションを促進する及び細胞内で分子を安定化する内部糖修飾並びに細胞内で核酸をさらに安定化する末端修飾を含む。さらに企図されるのは、合成miRNAを含有する細胞を特定するために、顕微鏡又は他の方法で検出することができる修飾である。
核酸は、例えば、化学合成、酵素的産生又は生物学的産生など、当業者に公知の任意の技法によって作製することができる。
miRNAは、典型的には、2つの鎖、すなわち、研究される成熟miRNAと配列が同一である活性鎖と活性鎖に少なくとも部分的に相補的である相補鎖を含む。活性鎖は、生物学的に関連する分子であり、mRNAの分解又は翻訳の制御のいずれかによって翻訳をモジュレートする細胞内の複合体によって優先的に取り込まれるべきである。活性鎖の優先的取込みは、2つの重大な結果を有する:(1)前記miRNAの観察される活性が劇的に増加し、(2)意図しない効果が取込みによって誘導され、相補鎖の活性化が本質的に排除される。本発明によれば、いくつかのmiRNAの設計を使用して、活性鎖の優先的取込みを確保することができる。
相補鎖の5’末端のホスフェート又はヒドロキシル以外の安定な部分を導入することにより、miRNA経路におけるその活性が損なわれる。このことによって、miRNAの活性鎖のみが、細胞において翻訳を調節するために使用されることが確実となる。5’修飾としては、これらに限定されないが、NH2、ビオチン、アミン基、低級アルキルアミン基、アセチル基、2’O−Me、DMTO、フルオレセイン、チオール、若しくはアクリジン又はこのタイプの官能性を有する任意の他の基が挙げられる。
miRNA又はそのソースが導入されるか又はmiRNAの存在が評価される細胞は、任意の生物に由来するか又は含有されていてもよい。好ましくは、細胞は、脊椎動物の細胞である。より好ましくは、細胞は、哺乳動物の細胞である。さらにより好ましくは、細胞は、ヒトの細胞である。
RNA分子は、ベクターに含まれる核酸分子によってコードされていてもよい。用語「ベクター」は、複製され得る細胞に導入するために核酸配列を挿入することができるキャリア核酸分子を指すために使用される。核酸配列は、「外因性」であってもよく、これは、核酸配列が、ベクターが導入される細胞に対して外来であること、又は配列が、その配列が通常見られない宿主細胞の核酸内の位置ではなく、細胞内の配列に対して相同であることを意味する。ベクターは、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、レンチウイルス、及び植物ウイルス)、及び人工染色体(例えば、YAC)を含む。当業者は、共に参照により本明細書に組み込まれる、Sambrookら、1989年及びAusubelら、1996年に記載されている、標準的な組換え技法によってベクターを構築するために十分に用意するであろう。修飾されたゲロニンなどの修飾されたポリペプチドをコードすることに加えて、ベクターは、タグ又は標的分子などの非修飾ポリペプチド配列をコードしてもよい。標的分子は、所望の核酸を、対象の身体内の特定の器官、組織、細胞、又は他の位置に方向付ける分子である。
種々の化合物をナノ粒子の周辺に付着させ、細胞膜を通るそれらの輸送を促進してきた。HIV TAT、HSV VP22、Drosphila antennapedia、及び他のタンパク質に見られる短いシグナルペプチドは、膜を通る生体分子の急速な移入を可能にすることが見出されている(Schwarze 2000年によって精査された)。これらのシグナルペプチドは、タンパク質形質導入ドメイン(PTD)と称され、オリゴヌクレオチドに結合して、それらの培養細胞への送達を促進している(Eguchi A、Dowdy SF、Trends Pharmacol Sci.、2009年 7:341〜5頁)。同様に、ポリL−リジンをオリゴヌクレオチドにコンジュゲートさせ、実効負電荷を低下させ、細胞への取込みを改善させた(Leonetti 1990年)。様々なシグナルペプチド又はリガンド又は形質導入ペプチド又はリガンドを、例えば、ペプチド又はリガンドを本明細書で先に定義した親油性アンカーにコンジュゲートさせることによって、本発明によるナノ粒子の表面に連結させることができる。
表現型形質に影響を及ぼすmiRNAは、治療適用及び診断適用に対する介入点を提供する(特定のmiRNAの存在又は非存在をスクリーニングすることによって)。本発明のRNA分子を使用して、前出の項目で議論した疾患又は状態のいずれかを処置できることが具体的に企図される。さらに、上記方法のいずれかを、本発明の治療態様及び診断態様に関して用いることもできる。例えば、miRNAを検出すること又はそれをスクリーニングすることに関する方法を、診断の文脈で用いることもできる。治療適用では、有効量の本発明のmiRNAが、動物におけるものであってもそうでなくてもよい細胞に投与される。一部の実施形態では、治療有効量の本発明のmiRNAが、疾患又は状態の処置のために個体に投与される。用語「有効量」は、本明細書で使用される場合、それが投与される細胞又は組織において所望の生理学的変化をもたらすのに必要である、本発明の分子の量として定義される。用語「治療有効量」は、本明細書で使用される場合、本明細書で先に定義した血管新生に関連する疾患又は状態に関して所望の効果を達成する、本発明の分子の量として定義される。当業者は、多くの場合、分子は、治癒をもたらさないかもしれないが、部分的な利益、例えば、少なくとも1つの症状の軽減又は改善をもたらすことができることを容易に認識する。一部の実施形態では、いくつかの利益を有する生理学的変化は、治療上有益であるとも考えられる。よって、一部の実施形態では、生理学的変化をもたらす分子の量は、「有効量」又は「治療有効量」とみなされる。
本発明の分子は、一般的に、意図される目的を達成するために有効な量で使用される。疾患状態を処置又は防止するための使用では、本発明の分子、又はその医薬組成物は、治療有効量で投与又は適用される。治療有効量は、症状を軽快させるか又は防止するのに、又は処置される患者の生存を延長するのに有効な量である。治療有効量の決定は、特に、本明細書で提供される詳細な開示を考慮して、十分に、当業者の能力の範囲内である。全身投与では、治療有効用量は、in vitroアッセイから最初に推定することができる。例えば、用量は、細胞培養において決定されるEC50を含む循環濃度範囲を達成するために、動物モデルで製剤化することができる。このような情報を使用して、ヒトにおいて有用な用量をより正確に決定することができる。初期投薬量は、当技術分野で周知の技法を使用して、in vivoデータ、例えば、動物モデルから推定することもできる。当業者は、動物データに基づいて、ヒトへの投与を容易に最適化することができる。投与量と投与間隔は、個々に調整され、治療効果を維持するのに十分な分子の血漿レベルをもたらすことができる。注射による投与のための通常の患者の投薬量は、1日に0.01〜0.1mg/kg、又は1日に0.1〜5mg/kg、好ましくは1日に0.5〜1mg/kg又はそれ以上の範囲である。治療上有効な血漿レベルは、毎日複数用量を投与することによって達成することができる。
本明細書に記載の組成物のいずれかは、キットに含まれていてもよい。非限定的な例では、個々のmiRNAはキットに含まれ、ジアミノ脂質も含まれる。キットは、合成miRNAの送達の作用を制御するために使用することができる、1つ又は複数の陰性対照合成miRNAをさらに含んでもよい。キットは、合成miRNAの2つの鎖のハイブリダイゼーションを容易にするための水及びハイブリダイゼーション緩衝液をさらに含んでもよい。キットは、miRNAの細胞への送達を容易にするための1つ又は複数のトランスフェクション試薬(複数可)を含んでもよい。
「配列同一性」は、本明細書において、配列を比較することによって決定される、2つ又はそれより多い核酸(ヌクレオチド、ポリヌクレオチド、RNA、DNA)配列の間の関係として定義される。当技術分野では、「同一性」は、核酸配列間の配列の関連性の程度も意味し、場合場合で、このような配列のストリング間のマッチによって決定される。「同一性」及び「類似性」は、これらに限定されないが、Computational Molecular Biology、Lesk, A. M.編、Oxford University Press、New York、1988年;Biocomputing: Informatics and Genome Projects、Smith, D. W.編、Academic Press、New York、1993年;Computer Analysis of Sequence Data、Part I、Griffin, A. M.、及びGriffin, H. G.編、Humana Press、New Jersey、1994年;Sequence Analysis in Molecular Biology、von Heine, G.、Academic Press、1987年;並びにSequence Analysis Primer、Gribskov, M. 及びDevereux, J.編、M Stockton Press、New York、1991年;並びにCarillo, H.,、及びLipman, D.、SIAM J. Applied Math.、48:1073頁(1988年)に記載されているものを含む、公知の方法によって容易に算出することができる。実施形態では、同一性は、所与の配列番号の全長に関して評価される。
本発明による組合せにおいて使用するための化学療法剤の例としては、チオテパ及びシクロホスファミドなどのアルキル化剤;ブスルファン、インプロスルファン及びピポスルファンなどのアルキルスルホネート;ベンゾドーパ(benzodopa)、カルボコン、メツレドーパ(meturedopa)、及びウレドーパ(uredopa)などのアジリジン;アルトレタミン、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホロアミド、トリエチレンチオホスホロアミド及びトリメチロールメラミンを含むエチレンイミン及びメチロールメラミン(methylamelamines);アセトゲニン(特に、ブラタシン及びブラタシノン);カンプトテシン(合成類似体トポテカンを含む);ブリオスタチン;カリスタチン;CC−1065(アドゼレシン、カルゼルシン及びビセレシン合成類似体を含む);クリプトフィシン(特に、クリプトフィシン1及びクリプトフィシン8);ドラスタチン;デュオルカマイシン(合成類似体、KW−2189及びCBI−TMIを含む);エリュテロビン;パンクラチスタチン;サルコジクチイン;スポンジスタチン;クロラムブシル、クロルナファジン、コロホスファミド(cholophosphamide)、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、塩酸メクロレタミンオキシド、メルファラン、ノブエンビキン、フェネステリン、プレドニマスチン、トロホスファミド、ウラシルマスタードなどのナイトロジェンマスタード;カルムスチン、クロロゾトシン、フォテムスチン、ロムスチン、ニムスチン、及びラニムスチンなどのニトロソウレア;エンジイン抗生物質などの抗生物質(例えば、カリケアマイシン、特にカリケアマイシンガンマ及びカリケアマイシンオメガ);ジネマイシンAを含むジネマイシン;クロドロネートなどのビスホスホネート;エスペラマイシン;並びにネオカルジノスタチン発色団及び関連する色素タンパク質エンジイン抗生物質発色団、アクラシノマイシン、アクチノマイシン、アントラマイシン、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン、カルビシン、カルミノマイシン、カルジノフィリン、クロモマイシン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、デトルビシン、6−ジアゾ−5−オキソ−L−ノルロイシン、ドキソルビシン(モルホリノ−ドキソルビシン(morpholmo−doxorubicm)、シアノモルホリノ−ドキソルビシン、2−ピロリン−ドキソルビシン及びデオキシドキソルビシンを含む)、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マルセロマイシン、マイトマイシンCなどのマイトマイシン、マイコフェノール酸、ノガラマイシン、オリボマイシン、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン、ピューロマイシン、クエラマイシン、ロドルビシン、ストレプトニグリン、ストレプトゾトシン、ツベルシジン、ウベニメクス、ジノスタチン、ゾルビシン;メトトレキサート及び5−フルオロウラシル(5−FU)などの抗代謝薬;デノプテリン、メトトレキサート、プテロプテリン、トリメトレキサートなどの葉酸類似体;フルダラビン、6−メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニンなどのプリン類似体;アンシタビン、アザシチジン、6−アザウリジン、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン、フロキシウリジンなどのピリミジン類似体;カルステロン、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトンなどのアンドロゲン;アミノグルテチミド、ミトタン、トリロスタンなどの抗副腎剤;フォリン酸などの葉酸補填剤;アセグラトン;アルドホスファミドグリコシド;アミノレブリン酸;エニルウラシル;アムサクリン;ベストラブシル;ビスアントレン;エダトラキセート;デフォファミン;デメコルシン;ジアジコン;エルフォルミチン;エリプチニウム酢酸塩;エポチロン;エトグルシド;ガリウムトリニトラート;ヒドロキシウレア;レンチナン;ロニダイニン(lonidainine);マイタンシン及びアンサマイトシンなどのマイタンシノイド;ミトグアゾン;ミトキサントロン;モピダンモール(mopidanmol);ニトラエリン(nitraerine);ペントスタチン;フェナメット;ピラルビシン;ロソキサントロン;ポドフィリン酸;2−エチルヒドラジド;プロカルバジン;PSK多糖複合体;ラゾキサン;リゾキシン;シゾフィラン;スピロゲルマニウム;テヌアゾン酸;トリアジクオン;2,2’,2’’−トリクロロトリエチルアミン;トリコテセン(特に、T−2トキシン、ベラクリン(verracurin)A、ロリジンA及びアングイジン);ウレタン;ビンデシン;ダカルバジン;マンノムスチン;ミトブロニトール;ミトラクトール;ピポブロマン;ガシトシン(gacytosine);アラビノシド(「Ara−C」);シクロホスファミド;チオテパ;タキソイド、例えば、パクリタキセル及びドセタキセル;クロラムブシル;ゲムシタビン;6−チオグアニン;メルカプトプリン;メトトレキサート;シスプラチン、オキサリプラチン及びカルボプラチンなどの白金配位錯体;ビンブラスチン;白金;エトポシド(VP−16);イホスファミド;ミトキサントロン;ビンクリスチン;ビノレルビン;ノバントロン;テニポシド;エダトレキサート;ダウノマイシン;アミノプテリン;ゼローダ;イバンドロネート;イリノテカン(例えば、CPT−II);トポイソメラーゼ阻害剤RFS2000;ジフルオロメチルオルニチン(DMFO);レチノイン酸などのレチノイド;カペシタビン;ゲフィチニブ、並びに上記のいずれかの薬学的に許容される塩、酸又は誘導体が挙げられる。
一般式(I)のジアミノ脂質を提供するための一般的方法
対応する式T1−OH、T2−OH、又はT3−OHのアルコールは一般的に市販されている。これらのアルコールは、当技術分野で公知の方法を使用して、例えば、ピリジニウムクロロクロマートを使用して、対応するアルデヒドに変換することができ、又はアルデヒドがさらに市販されている場合もある。次いで、アルデヒドを必要とされるジアミンと、例えば、N−,エチル−1,3−ジアミノプロパン(式中、n=1)と反応させて、イミンを形成し、次に、T1、T2、及びT3部分の還元アミノ化で対応するアミンを還元することができる。以下は非限定的な例である:
ファルネソール(又はファルネシルアルコール)の混合物(10.0g、44.9mmol、1等量)に、500mLのジクロロメタンピリジニウムクロロクロマート(PCC、14.5g、67.4 mmol、1.5等量)中の炭酸ナトリウム(2.38g、22.5mmol、0.5等量)及び分子篩3Å(5g)を添加した。懸濁液を室温で1時間撹拌した。次いで、250mLのジクロロメタンを混合物に添加し、懸濁液を250mLのシリカゲル(シリカゲル60、0.04〜0.063mm、230〜400メッシュ)を通して濾過した。溶媒を減圧下で蒸発させたところ、得られた残留物はアルデヒドであり、それをさらに精製することなく使用した。シクロヘキサン溶媒系(Rf=0.5)中10%の酢酸エチルと染色のためのメタノール中10%の硫酸を使用して、化合物をTLCプレートで解析した。
1,2−ジクロロエタン100mL中ファルネサール(8.75g、39.7mmol、3.5等量)及びN−メチル−1,3−ジアミノプロパン(1g、11.3mmol、1.0等量)の溶液に、NaBH(OAc)3(10.9g、51.4 mmol、4.55等量)及び酢酸(2.94mL、51.4mmol、4.55等量)を室温で添加した。反応混合物を室温で18時間撹拌した。水酸化ナトリウム2M溶液で反応をクエンチし、ジクロロメタン(100mL)で混合物を2回抽出した。合わせた有機層をブライン(塩化ナトリウムの飽和水溶液)で洗浄し、Na2SO4で脱水した。溶媒を減圧下で除去し、粗生成物をシリカゲル(300mLのシリカゲル60、0.04〜0.063mm、230〜400メッシュ)によるフラッシュクロマトグラフィーに供した。10カラム容積の、酢酸エチルから0.5%のトリメチルアミンを含有する酢酸エチル中の4%メタノール(MeOH)までの勾配を用いて、生成物を溶出させた。所望の化合物が溶出している場合、20mLの画分を回収し、その後、化合物溶出液50〜100mLの画分を回収した。ジクロロメタン溶媒系中5%のMeOHと染色のためのメタノール中10%の硫酸(Rf=0.4)を使用して、回収した画分をTLCプレートで解析した。表題の化合物を、RP−HPLCによって測定した場合の典型的純度が96%以上である、淡黄色の油状物(約4.6g、6.6mmol、収率60%;化学式:C49H84N2;正確な質量:700.66)として得た。
一般的手順
すべてのプラスチックバイアルとボトルを、使用前に滅菌濾過した脱イオン水で濯いだ。gスケールでの重量に対する標準誤差は、0.01gであり、mgでは0.001gである。
800mLの滅菌脱イオン水に、10.51gのクエン酸一水和物と0.93gのNaOHを添加した。pHを測定し、必要な場合は、2MのNaOHでpH3に調整した。滅菌脱イオン水を添加して1Lにした。試料を濾過する前に、20mLの滅菌濾過脱イオン水で濯いだ0.2μmのボトルトップフィルターを通して緩衝液を濾過した。
10gのPBS ダルベッコ w/o Ca2+ w/oMg2+を10Lの滅菌脱イオン水中に溶解させた。
ジアミノ脂質、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン(DSPC)、コレステロール、及びPEG2000−DSGのストック溶液を、エタノール中50mMの濃度で調製、混合し、それぞれ、40:10:48:2のモル比で得た。最終脂質混合溶液をエタノールで希釈して、33.8mMの濃度にした。H2O中20mg/mLの濃度の核酸(RNA)ストック溶液を、50mMのクエン酸ナトリウム緩衝液(pH3)中に希釈し、最終濃度を0.65mg/mLとした。RNA質量に対する総脂質の比は、10.3であった。
参照として、いわゆるNov340脂質ナノ粒子も調製した。Nov340脂質ナノ粒子の組成物は、米国特許第9737482号に記載されており、以下のタイプの脂質を含む:両性脂質対(カチオン性及びアニオン性脂質)及び中性脂質。Nov340脂質ナノ粒子の脂質組成は以下の通りである:
DOPE ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン
CHEMS コレステロールヘミスクシネート
MoChol 4−(2−アミノエチル)−モルホリノ−コレステロールヘミスクシネート
この発明で使用されるすべてのmiRNA及びsiRNA分子、例えば、miR−193a−3p、miR−7−5p、及びHRPT1 siRNAなどでは、パッセンジャー鎖とガイド鎖が、Oligopilot 400オリゴヌクレオチド合成機などの市販の合成機を使用して、固相合成によって化学的に合成される。一本鎖を製造するために使用されるプロセスは、si/miRNAオリゴヌクレオチドを生成するために、産業において通常使用される。合成後、オリゴヌクレオチドの一本鎖が固体支持体から切断され、脱保護される。粗製のオリゴヌクレオチドの一本鎖は、HPLCを使用して精製される。その後、一本鎖は脱塩され、濃縮され、アニーリングされ、凍結乾燥される。これらの実施例を通して、何か他に意図されていることが文脈によって明らかにならなければ、miR−193aは、配列番号219のアンチセンス鎖を有する配列番号218(模倣体、センス)のmiRNA−193a−3pの二本鎖を指す。これは、in vitro研究において、ネイキッドで使用されるか、又はin vivo研究において製剤と一緒に使用される。
材料及び方法
RNAの単離
全RNAを、製造業者の使用説明書に従って、TriZol(Thermo Fisher)を使用して、腫瘍から単離した。単離したRNAをヌクレアーゼを含まない水(NFW)中に再懸濁させた。
cDNAを調製するために、最初に100ngの全RNAを、NFW中最終体積が12.5μlのRandom Hexamers(Qiagen;最終濃度 2μM)と混合し、70℃で5分間変性させ、直ちに氷上で冷却した。次に、5×RT緩衝液(Promega)4μl、25mMのdNTP(Promega)0.4μl、200U/μLのMMLV RT酵素(Promega)1μl、40U/μLのRNAse阻害剤(Promega)0.5μL及びNFW1.6μLからなるcDNA合成ミックス7.5μlを添加した。以下のcDNA合成プロトコールを使用した:
1. 10分 25℃
2. 60分 37℃
3. 5分 85℃
4. 無限 4℃
1. cDNA 1μL
2. フォワードプライマー(250μM) 0.05μL
3. リバースプライマー(250μM) 0.05μL
4. NFW 8.9μL
5. SYBR Green(Bio−Rad) 10μL
1. 1サイクル:5分 95℃
2. 40サイクル:15秒 95℃+30秒 60℃
TGI効果を決定するために、T/C(腫瘍/対照)比を、各群の個々のマウスに対して、TV(腫瘍体積)の相対的パーセンテージ増加を算出し(基準点として無作為化の日のTV)、次いで、処置群に関するTVの群のメジアンの相対的増加を、PBS群のもので除すことによって決定した。各処置群内のはずれ値(個々のTVに関する)を、式Q1−1.5×IQR(下限)とQ3+1.5×IQR(上限)を使用して決定した。
統計分析をGraphpad Prism 7を使用して実施した。両側、ノンパラメトリックMann−Whitney検定を使用して、相対的腫瘍体積の差を算出した(「X」日目のTVを無作為化の日のTVで除した)。すべての統計検定で、検定項目の効果をPBS群と比較した。p値<0.05を統計的に有意とみなした。
新たに単離した同所性4T1腫瘍を、最小腫瘍体積(TV)の300mm3に達した際に、miRNA−193a処置後5日目(1週目)と12日目(2週目)に、FACS分析のために調製した。腫瘍試料を、Miltenyiからのマウス腫瘍分解キット(カタログ番号130−096−730)を使用して消化した。腫瘍細胞消化後に、1μg/mlのFc−Block(Mouse BD Fc Block(商標) カタログ番号553141)を含む200μlの染色緩衝液中に、細胞を再懸濁させ、暗所で4℃にて15分間インキュベートした。様々なマーカー(CD45、CD3、CD4、CD8、FoxP3、CD335、F4/80、CD11b、Gr−1、CD73、LAG3/CD223、IL−2、IFN−r、PD−1、L/D染料)がFACS分析のために使用されている。IL−2、IFN−r及びLAG3を除くすべてのマーカーのための抗体混合物を、各試料用にFcブロッキング緩衝液中で希釈し、暗所で、氷上にて30分間染色した。次いで、2mlの氷冷PBSを各チューブに添加することによって、細胞を穏やかに洗浄した。各チューブを300gで5分間遠心分離し、上清を廃棄した。細胞内マーカー(IL−2、IFN−r及びLAG3)を検出するために、消化された細胞の刺激を実施した。そうするために、BD GolgiPlug(商標)を含む白血球活性化カクテルを使用した。水浴中でカクテルを37℃で急速に解凍し、1mLの細胞培養物(例えば、約106細胞/mL)毎に、2μLのカクテルを添加し、しっかり混合した。刺激するために、細胞培養ミックスを37℃の加湿したCO2インキュベーターに4〜6時間置いた。次いで、細胞を採取し、FACS染色緩衝液で洗浄した。染色のために、細胞ペレットをパルスボルテックスで再懸濁させ、200ulの調製したFixation/Permeabilizationを各試料に添加した。試料を、暗所で、RTにて10分間インキュベートした。次いで、1mlの1×透過緩衝液(蒸留したH2Oで希釈した10×透過緩衝液から作製した)を添加することによって、試料を2回洗浄し、続いて遠心分離し、上清をデカントし、各試料を、1×透過緩衝液中のFoxP3、IFN−r及びIL−2を含有する抗体カクテルと共にインキュベートし、暗所で室温にて30分間インキュベートした。最後に、細胞を150μlの染色緩衝液に再懸濁させ、血球計算機で解析した。Kaluzaフローサイトメトリーソフトウェア(Beckman Coulterから)によってデータを解析した。
すべての場合に、モノクローナル抗体を、リン酸緩衝生理食塩水200μl中で、腹腔内注射によりマウスに送達した。枯渇及び中和実験のために、CD4(クローンGK1.5)とCD8(クローン2.43)抗体を同時に使用した。枯渇又は中和は、腫瘍細胞接種の1週間前に開始した。CD4+及びCD8+T細胞枯渇のために、250μgの示された抗体を、最初の週にQOD×3のスケジュールで、次いで、Q3Dのスケジュールでさらに3週間送達した。所望のT細胞集団(複数可)の枯渇を、フローサイトメトリーによって全血で確認した(データは示さず)。100μLの全血を、腫瘍細胞接種後0日目と14日目に、動物毎に採血した(0日目=QOD×3の24時間後、14日目:QOD×3とQ3Dを2週間の24時間後)。次いで、抗体と混合した。穏やかなボルテックスの後に、ミックスを、暗所で、室温(RT)にて30分間インキュベートした。2mlの1×FACS溶解緩衝液を溶液に添加し、RTで10分間インキュベートした。次いで、溶液ミックスを5分間遠心分離し、上清を除去した。最後に、細胞を、150μlの染色緩衝液に再懸濁させ、血球計算機で解析した。BD Biosciencesからの抗CD3を除き、すべてのフローサイトメトリー抗体(抗−CD45−PerCP−cy55(クローン:30−F11、抗i−CD3−FITC(クローン:17A2)、抗−CD4−APC(クローン:RM4−4)、抗−CD8−PE(クローン:53−6.7))をBiolegendから購入した。(QOD×3:1日置きに3日間、Q3D:3日置き(月曜日〜木曜日))。
生存マウス由来の養子CD3+ T細胞のナイーブマウスへの移入を、脾臓、補助、上腕、及び鼠径リンパ節切除後に実施した。細胞懸濁液を示した器官とプールから作製した。次いで、製造業者のプロトコール(Miltenyi Biotech)に従って、CD3+ T細胞を磁性ビーズを使用してプールから単離した。マウス1頭当たり1×107のCD3+ T細胞を静脈内に注射した。
がん細胞型に応じて、3000〜6000個の細胞を96ウェルプレートに播種した。細胞が付着した後、これらを異なる濃度のmiRNA−193aでトランスフェクトし、異なる時点で生存能を測定した。CellTiter 96 AQueous One Solution Cell Proliferation Assay(Promega)を使用して生存能の測定を実施した。20μLのMTS試薬を96ウェルプレートの各ウェルの100μLの培地に添加し、37℃で2時間インキュベートした。96ウェルプレートリーダーで各試料について、490nMで吸光度を測定した。
がん細胞型に応じて、3000〜6000個の細胞を96ウェルプレートに播種した。細胞が付着した後、これらを異なる濃度のmiRNA−193aでトランスフェクトし、異なる時点でアポトーシス誘導を測定した。このアッセイは、Promegaのキットを使用して実施した。100μLのカスパーゼ試薬を96ウェルプレートの各ウェルの100μLの培地に添加し、暗所で、室温にて2時間インキュベートした。蛍光プレートリーダーで蛍光シグナルを読み取った。
細胞の移動能をチェックするために、0.8μm孔径の膜(BD falcon)によって分離された2つの培地を充填した区画のチャンバーに基づくボイデンチャンバーアッセイを実施した。このアッセイでは、細胞型に応じて、60,000〜120,000個の細胞を、無血清培地中の膜の上の区画に播種し、膜の孔を通って、培地中に血清が存在する下の区画に移動させた。血清は、化学誘因物質として作用する。適当なインキュベーション時間の後、2つの区画の間の膜を固定し、染色して、各膜から6つの異なる画像を得た。移動性細胞の数を、Image J 分析を使用して計数した。
がん細胞型に応じて、3000〜6000個の細胞を96ウェルプレートに播種した。細胞が付着した後、これらを異なる濃度のmiRNA−193aでトランスフェクトし、異なる時点で細胞周期プロファイルを測定した。選択した時点で、培地をウェルから吸い取り、DNA染色溶液(Hoescht 33342/Saponin/PFA)を各ウェルに添加し、37℃で2時間インキュベートした。次いで、Thermo CellInsiteを使用して細胞の画像を得て、ここで、核を特定し、核強度を測定した。プログラムRを使用して核強度を分析し、DNA含量に基づいて細胞周期(G0/G1、S、G2/M)の異なる相を決定した。
アポトーシスを受けている細胞を特異的に検出するために、FITC Annexin V アポトーシス検出キット(BD pharmingen)を使用した。がん細胞型に応じて、異なる数の細胞を6ウェルプレートに播種し、測定の時点で約70%のコンフルエンシーを有した。細胞が付着した後、これらを異なる濃度のmiRNA−193aでトランスフェクトし、製造業者のプロトコールに従って、異なる時点でアポトーシスアッセイを測定した。このアッセイで、本発明者らは、細胞周期のSubG1相を示すアポトーシス細胞のパーセンテージを検出した。
NT5E(CD73)の3’非翻訳領域(UTR)を含有するホタルルシフェラーゼレポーター構築物を、10nMのmiRNA−193a−3p又はスクランブル対照と共にHela細胞においてトランスフェクトした。細胞抽出物をトランスフェクションの24時間後に調製し、Dual Luciferase Reporter Assay System(Promega)を使用して、ルシフェラーゼ活性を測定した。3’UTRがmiRNAの標的である場合、miRNAは3’UTRと相互作用し、より低いルシフェラーゼシグナルをもたらす。
およそ1×106個の細胞を採取し、免疫沈降RIPA溶解緩衝液中に溶解させ、ライセートをPVDF膜上にブロッティングした。一次抗体で膜を終夜プローブし、結合した抗体をHRP連結二次抗体(Cell−Signalling)を使用して可視化した。ウエスタンブロットに使用した抗体は、Cell Signalling Technologyからの抗NT5E(D7F9A)、及びSanta Cruzからの抗αチューブリンを含んでいた。αチューブリンをウエスタンブロット実験のローディング対照として使用した。
2000個のA2058黒色腫細胞を、96ウェルプレートのウェル毎に播種した。播種の24時間後に、細胞を異なる濃度のmiRNA−193a−3p、スクランブル対照、対照としてのsiNT5E及びsiPoolでトランスフェクトした。トランスフェクションの24時間と48時間後に、miRNA−193a−3pの標的遺伝子としてのCD39(ENTPD1)及びCD73(NT5E)を阻害した後、マラカイトグリーンホスフェートアッセイ(Sigma Aldrich)を使用して、ヌクレオシド三リン酸ATPからのリン酸の遊離を測定した。反応からの急速な色素形成を、プレートリーダー(600〜660nm)で都合よく測定することができる。
4000個のA2058黒色腫細胞を、96ウェルプレートのウェル毎に播種した。播種の4時間後に、細胞を異なる濃度のmiRNA−193a−3p、スクランブル対照、対照としてのsiNT5E及びsiPoolでトランスフェクトした。トランスフェクションの24時間後に、細胞を500μMのAMPで処理し、処理の24時間後に、アデノシン測定キット(BioVision)からのステップに従って、アデノシン測定を実施した。
6つのヒトがん細胞株を適当な培地で培養し(表3)、Lipofectamine RNAiMAX(Thermofisher)を使用する10nMのmiRNA−193a−3p又は偽によるトランスフェクションの24時間前に、6ウェルプレートに播種した。トランスフェクションの16時間後に試薬を吸い取り、新たな6ウェルプレートに細胞を継代した。トランスフェクションの24時間後に培地を吸い取り、プレートを−80℃で保存した。各細胞株について、3つの独立した複製を実施した。
miRNeasy Mini kit(Qiagen)を使用してRNAを単離した。手順は、オンカラムDNase処理を含んだ。NanodropOneでRNA濃度を測定した。150ngのそれぞれ独立した複製をプールし、450ngの試料(表)をGenomeScan BV(オランダ、ライデン)に提出した。
ポリA濃縮を実施し、続いて、GenomeScan BVでIllumina NovaSeq 6000を使用して、次世代RNAシーケンシングを実施した。データ処理ワークフローは、生データ品質管理、アダプタートリミング、及び短いリードのアラインメントを含んだ。参照GRCh37.75.dna.primary_assemblyを各試料に対するリードのアラインメントに使用した。アラインメントファイルにマッピングした位置に基づいて、どの程度の頻度でリードが転写物にマッピングされたかを決定した(特徴集計)。集計をカウントファイルに保存し、下流RNA−Seq示差発現分析のためのインプットとした。
GenomeScan BVによって設定された短いリードデータに関して、示差発現分析を実施した。リード集計をR platform v3.4.4内の統計パッケージであるDESeqパッケージ v1.30.0にローディングした。試料サイズが小さく、過剰に分散したRNA−Seqデータに関して、2つの条件(偽対miRNA−193a−3p)の間の示差発現遺伝子を見つけるために、DESeqを特異的に開発した。示差発現比較の群分けを表に示す。
4〜6週齢の雌の胸腺欠損ヌードマウス(Crl:NU(NCr)−Foxn1nu; Charles River)に、50%のマトリゲル中1×107個のA2058細胞を、脇腹に、片側性に皮下注射した(マウス1頭当たり0.2mL)。無作為化の時点で、TVは134.5〜538.7mm3の範囲であった(メジアン213.4、IQR178.3〜265.9)。体重とTV(カリパス測定)を1週間に3回決定した。
本発明によるナノ粒子は、subq腫瘍へのsiHPRT1の機能的送達を媒介し、一方、NOV340は媒介しなかった(図1)。
4〜6週齢の雌の胸腺欠損ヌードマウス(Crl:NU(NCr)−Foxn1nu; Charles River)に、50%のマトリゲル中1×107個のA2058細胞を、脇腹に、片側性に皮下注射した(マウス1頭当たり0.2mL)。無作為化の時点で、TV(腫瘍体積)は139.4〜245.5mm3の範囲であった(メジアン161.3、IQR=149.9〜175.1)。体重とTV(カリパス測定)を1週間に3回決定した。
本発明によるナノ粒子中で製剤化したmiRNA−193aは、ヒトA2058黒色腫腫瘍のsubqマウスモデルにおいて有意なTGI効果を媒介した。
7〜8週齢の雌のSCID/Beigeマウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)に、subq成長Hep3b腫瘍の単一の2×2×2mm片を左の肝葉に同所的に移植した。21日目のAFPレベルに基づいてマウスを無作為化した。無作為化の時点で、AFPレベル(血漿1ml当たりのng)は1019〜19779ng/mlの範囲であった(メジアン 5203、IQR=2690〜9498)。処置を22日目に開始し、3週間続けた(投与スキームについては表8を参照されたい)。AFPを1週間に1回測定し(合計4回)、BWを1週間に2回測定した。研究の終了時に、腫瘍重量も決定した。QD×3、QD×5=1日当たり1回の注射を3日又は5日連続;BIW=1週間に2回;BID=1日に2回;po=経口。
ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiR−193aは、ヒトHep3b HCC(肝細胞癌)腫瘍の同所性マウスモデルにおいて有意なTGI効果を媒介したが、ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiR−7又はNOV340では、それぞれ、非常に弱い効果を示すか又は効果を示さなかった。
6〜8週齢の雌のBALB/c マウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)に、PBS中3×105個の4T1マウス腫瘍細胞(マウス1頭当たりの0.1mL)を乳房脂肪パッドに注射した。無作為化の時点で、TVは、69.9〜173.9mm3の範囲であった(メジアン 105.7、IQR=100.7〜125.4)。体重とTV(カリパス測定)は、1週間に2〜3回決定した。
ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiRNA−193aによる処置によって、腫瘍切除後の腫瘍再成長が低減した。
ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiRNA−193aによる処置によって、腫瘍切除後と4T1腫瘍の再負荷後の両方で腫瘍再成長が低減し、マウスの生存にもプラスの影響を及ぼした。予想通り、再移植したマウス4T1細胞は、ナイーブ動物においてsubq腫瘍を形成することができた。miRNA−193aで処置した動物における腫瘍取込み/成長の顕著な防止は、4T1細胞に対する長期免疫化を強く示唆している。
予想通り、移植したマウスH22細胞は、ナイーブ動物においてsubq腫瘍を形成することができた。効率的な(100%)腫瘍取込みがmiRNA−196aで処置したマウスにおいて起こったが、H22腫瘍成長の迅速な阻害が見られ、時間依存的退縮がもたらされた。このことは、関連しないH22細胞に対する長期免疫化を強く示唆する(交差抗原反応)。
腫瘍切除後の腫瘍再成長を低減し、マウスの生存にプラスの影響を及ぼした
免疫抑制から免疫刺激性4T1腫瘍微小環境へのシフトがもたらされた
miRNA−193aで処置した動物における腫瘍取込み/成長の顕著な防止は、4T1細胞に対する長期免疫化を強く示唆する(CD8+T細胞/Treg細胞>1)
効率的な(100%)腫瘍取込みがmiRNA−193aで処置した動物において起こるが、H22腫瘍成長の迅速な阻害が、時間依存的退縮をもたらし、関連しないH22細胞に対する長期免疫化を示唆する(交差抗原「ワクチン接種」)。
6〜8週齢の雌のBALB/cヌードマウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)に PBS中5×106個のA2058腫瘍細胞を、右脇腹に、片側性に皮下注射した(マウス1頭当たり0.1mL)。無作為化の時点で、TVは、50.3〜156.3mm3の範囲であった(メジアン 104.8、IQR=91.9〜127.1)。無作為化後、マウスは、異なる投与レジメンで異なるmiRNA−193a投与濃度を受けた(投与スキームについては表10を参照されたい)。BRAF阻害剤であるベムラフェニブも含まれた。体重とTV(カリパス測定)を1週間に3回決定した。*QD×3、QD×4=1日当たり1回の注射を3日又は4日連続;BIW=1週間に2回;BID=1日に2回。Po=経口。
6.7mg/kgの本発明によるナノ粒子中で製剤化したmiR−193aをQD×3で、腫瘍成長の有意な低減が観察されたが、他の投与レジメンでは弱い傾向しか示されなかった。
6〜8週齢の雌のBALB/cマウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)に、PBS中3×105個の4T1マウス腫瘍細胞(マウス1頭当たりの0.1mL)を乳房脂肪パッドに注射した。無作為化の時点で、腫瘍体積(TV)は、252.30〜370.45mm3の範囲であった。
QD×2のスケジュールで、10mg/kgを投与したmiRNA−193a処置により、様々な時点でのアポトーシス及び免疫経路に関与する標的mRNA発現の有意な低下がもたらされた。
miRNA−193a−3pの異なる生物学的効果を種々のがん細胞系で試験した(表13を参照されたい)。このために、様々な細胞を、異なる濃度(1、3、10nM)のmiRNA−193aで処置した。すべての実験について、対照(未処置、偽及びスクランブル)を測定した。すべてのアッセイは、24時間、48時間及び72時間の時点で実施した。表13に示されているデータは、指定した時点での10nM濃度のmiRNA−193aに関する結果である。すべての結果を定量し、偽対照に対して正規化した。10nMは、細胞がその濃度で毒性作用の徴候を示さないため、in vitroでのmiRNA−193a処置に対して好適な濃度であることが示された。
がん細胞株に関するmiRNA−193a処置は、アポトーシスを誘導し、細胞周期アレストプロファイルを増加させることによって、部分的に細胞生存率を低下させる。miRNA−193a処置はまた、がん細胞の細胞運動能も低下させ、がん細胞移動の阻害の役割を示している。
アデノシン生成は、特定の腫瘍が宿主免疫を回避するルートの1つである。CD39(ENTPD1)及びCD73(NT5E)は、ATPを脱リン酸化してアデノシンを生成する2つの細胞表面エクトエンザイムであり、よって、細胞外空間におけるアデノシン及びATPレベルを制御する。細胞外のアデノシンは、抗腫瘍T細胞免疫を制限することによって、腫瘍成長及び転移を促進することが示されている。CD73及びCD39は、ほとんどの腫瘍細胞でかなり過剰発現され、腫瘍微小環境におけるアデノシンレベルの上昇をもたらす。
miRNA−193aは、NT5E及びENTPD1を標的とすることによって、部分的に免疫抑制腫瘍微小環境を下方調節すること並びにアデノシン生成の阻害に役割を果たす。miRNA−193aはまた、NT5Eを標的とすることによって、アデノシンに誘導されるがん細胞の移動能を部分的に低下させる。
miRNA−193aの抗増殖特性を調査するために、本発明者らは、対照としての偽と比較して、異なる濃度(1nM、3nM及び10nM)及び時点(48時間、72時間及び96時間)でのmiRNA−193a−3p処置の際の異なるがん細胞の細胞周期状態をプロファイルした。miRNA−193a−3p処置は、Hep3B及びSNU449のHCC細胞株及び黒色腫A2058細胞においてG2/Mアレスト表現型をもたらし(図17)、これは、最終的には細胞死をもたらした(データは示さず)。同様の表現型がPanc1(膵臓がん細胞)及びH1975(肺がん細胞)で観察された(データは示さず)。miRNA−193a依存性G2/Mアレスト表現型に部分的に対処するために、G2/Mアレストにおいて役割を果たすいくつかのmiRNA−193a標的遺伝子の発現レベルを異なる時点で(24時間、48時間及び72時間)調査し、Hep3B、SNU449及びH1975がん細胞において下方調節されることが示された(図18)。これらの遺伝子の発現レベルは、G2/Mアレスト表現型が示される他の細胞株でも下方調節される(データは示さず)。MPP2及びSTMN1は、細胞骨格に関連し、したがって、G2/M相での細胞分裂及び増殖を調節するが、一方、YWHAZ及びCCNA2は、サイクリン依存性キナーゼに結合し、封鎖することによってG2/M相チェックポイントの調節に役割を果たす。
すべての検査したがん細胞株において、miRNA−193aの発現は、そのG2/Mアレスト表現型を誘導し、細胞分裂を停止するその効果によって、少なくとも部分的にがん細胞死を誘発する。この表現型は、細胞骨格及び細胞分裂に関連する遺伝子を阻害するマイクロRNA薬物によって部分的にもたらされる。
ハイスループットRNAシーケンシングの実施は、遺伝子及びエクソンレベルで、全トランスクリプトームの包括的特徴に対して、並びに高い解像度及び有効性で、差示的に発現した遺伝子、新規遺伝子及び転写物を特定する特有の能力に関する強力なツールとなっている。しかし、今日まで、がん発症におけるその特異的役割について非常に少ないmiRNAしか特徴付けられてこなかった。したがって、本発明者らは、10nMのmiRNA−193a−3p処置の24時間後に、A540及びH460(共に肺がん)、Huh7及びHep3B(共に肝臓がん)A2058(皮膚がん)及びBT549(乳がん)を含む6つの異なるがん細胞株でmiRNA−193a−3pを過剰発現させた後、ハイスループットRNAシーケンシングを使用した。遺伝子発現を対照としての偽と比較し、本発明者らは、差示的に発現した遺伝子及びそれらの生物学的経路を特定した。
6つの異なるがん細胞株におけるmiR−193aの過剰発現によって、異なる経路に影響を及ぼす種々の標的の阻害がもたらされた。6つの異なるがん細胞すべてにおいて顕著に標的化されているいくつかの共通遺伝子が存在したが、各細胞株においてのみ標的化された特有の遺伝子も存在し、状況依存的な効果が示された。少なくとも3つの異なるがん細胞株において標的とされた遺伝子に関するパスウェイエンリッチメント分析(pathway enrichment analysis)により、血管新生、小胞体ストレス応答、走化性、タンパク質輸送、ヌクレオシド代謝、グリコシル化、発癌、創傷治癒、及び免疫活性化の遺伝子サインが顕著に示される。これらのデータによって、miR−193aが腫瘍進行の重要なモジュレーターであり、複数の経路を標的とするその能力により、抗がん薬としての治療能力が魅力的であることが示唆される。
4T1がん細胞に対するmiRNA−193aで処置したマウスにおけるT細胞媒介性長期免疫を調査するために、実施例4.4に類似する条件で新たな研究を実施した。腫瘍接種の5日後に、マウスを2つの群に無作為化し、実施例4.4に類似する処置と投与レジメンを受けさせた(表9の群1〜2のみを参照されたい)。群の平均腫瘍体積が800mm3に達した場合に原発腫瘍を外科手術により除去した後に、処置を再度行い、58日目まで続けた。
miRNA−193aによる処置(この場合には、ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiRNA−193a−3p)により、4T1腫瘍細胞による再負荷後の腫瘍成長が低減され、マウスの生存が促進された。予想通り、再移植したマウス4T1細胞によって、ナイーブ動物におけるsubq腫瘍の形成が可能となった。miRNA−193aで処置した動物における腫瘍取込み/腫瘍成長の顕著な防止によって、4T1に対する長期間の免疫化が強く示唆された。以前に、マウス4T1細胞を再移植後に生存していたmiRNA−193aで処置したマウスは、T細胞非枯渇群と比較して、T細胞枯渇の際にのみ腫瘍再成長を示した。この結果は、T細胞に依存する免疫化を強く示す。さらに、以前にmiRNA−193aで処置した再負荷後も生存していたマウスからナイーブマウスへのT細胞の移入によって、4T1腫瘍による再負荷後の腫瘍再成長が抑制された。このことにより、miRNA−193aで処置したマウスにおけるT細胞媒介性免疫が強く示唆される。
この研究では、ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化したmiRNA−193aの効果を、12の同系腫瘍モデルのパネルにおける原発腫瘍成長に関して調査した。6〜8週齢のマウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)に、がんモデルに応じて、適当な数の同系がん細胞を皮下注射した(表18を参照)。無作為化の際に、腫瘍体積(TV)はおよそ80〜120mm3であった。体重とTV(カリパス測定)を1週間に2〜3回決定した。無作為化後に(0日目と示される)、マウスは、表19に示されているように、PBS又はmiR−193a(ジアミノ脂質ナノ粒子中で製剤化した)による処置を受けた。各腫瘍モデルは、表19に示したように2つの群を有した。マウスについて、最大4週間の処置後に、フォローアップを2週間行った後、安楽死させるようスケジュールを立てた。しかし、様々な処置及び実験腫瘍モデルの腫瘍成長速度に応じて、何頭かのマウスは、人道的エンドポイントで計画したよりも早く安楽死させた(1群当たりの平均TVが2000mm3に達するか又は個々のマウスが3000mm3のTVを示した場合)。H22、Pan02、B16−BL6、RM−1、B16F10、MC38、A20、及びEMT−6モデルにおいて、miRNA−193aは、腫瘍成長の阻害(TGI)を有意に誘導した。CT26、Renca、及びHepa1−6モデルでは、miR−193aによる処置は、有意なTGIを誘導しなかった(表20)。表20では、PBSと比較したmiRNA−193aによる腫瘍成長阻害(TGI)のパーセンテージを、処置群の間で最も直近の比較可能な時点でメジアン腫瘍体積を使用して計算した。
miRNA−193aによる処置によって、広範囲の同系腫瘍モデル(すなわち、H22、Pan02、B16−BL6、RM−1、B16−F10、MC38、A20、及びEMT−6)における原発腫瘍に関する有意な腫瘍成長阻害がもたらされた。これらの結果によって、miRNA−193aが、広範囲の同系モデルにおける確立された皮下原発腫瘍の成長への抑制剤効果を有することが示唆された。
6〜8週齢の雌のSCID/Beigeマウス(Shanghai Lingchang Bio−Technology Co. Ltd、中国、上海)の左の肝葉中に、単一の2×2×2mmの皮下成長したHep3b腫瘍片を、同所性移植した。21日目のAFPレベルに基づいて、マウスを無作為化した。無作為化の際に、AFPレベル(血漿1ml当たりのng)は、401〜40628ng/mlの範囲であった(メジアン 2536、IQR=1037〜5510)。処置は、ソラフェニブ、ビヒクル対照、又はNO340脂質ナノ粒子に包まれた様々なmiRNA(又はスクランブルされたmiRNA対照)によるものであった(Simonson及びDas、Mini Rev Med Chem、2015年、15(6):467〜474頁、PMID:25807941)。処置は、22日目に開始し、3週間続けた(表21の投与スキーム)。AFPを、週に1回、4週間測定し、BWを1週間に2回測定した。研究の終了時に、腫瘍重量も決定した。QODx9=1日置きに1回の注射を9回;BID=1日に2回;po=経口。
ソラフェニブと比較して、様々なNOV340ナノ粒子により製剤化したmiRNAによる処置は、腫瘍成長及び/又は重量を阻害することができない。
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Claims (18)
- ナノ粒子を含む組成物であって、前記ナノ粒子が、ジアミノ脂質及びmiRNA又はmiRNAのソースを含み、
i)前記miRNAが、miRNA分子、isomiR、又はその模倣体であり、抗がんmiRNAであり、配列番号17〜50で表されるシード配列の7ヌクレオチドのうちの少なくとも6つを含むシード配列を有するオリゴヌクレオチドが好ましく、前記miRNAは、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、又はそのisomiR、又はその模倣体からなる群から好ましくは選択され、
ii)前記ジアミノ脂質は、一般式(I)
(式中、
nは、0、1、又は2であり、
T1、T2、及びT3は、それぞれ独立して、任意選択で不飽和であり、0、1、2、3、又は4つの置換基を有するC10〜C18鎖であり、置換基は、C1〜C4アルキル、C1〜C4アルケニル、及びC1〜C4アルコキシからなる群から選択される)
のものである、組成物。 - 前記miRNAが、
i)miRNA−323−5p分子、miRNA−323−5p isomiR,、若しくはmiRNA−323−5p模倣体、又は
ii)miRNA−342−5p分子、miRNA−324−5p isomiR,、若しくはmiRNA−324−5p模倣体、又は
iii)miRNA−520f−3p分子、miRNA−520f−3p isomiR、若しくはmiRNA−520f−3p模倣体、又は
iv)miRNA−520f−3p−i3分子、miRNA−520f−3p−i3 isomiR、若しくはmiRNA−520f−3p−i3模倣体、又は
v)miRNA−3157−5p分子、miRNA−3157−5p isomiR、若しくはmiRNA−3157−5p模倣体、又は
vi)miRNA−193a−3p分子、miRNA−193a−3p isomiR、若しくはmiRNA−193a−3p模倣体、又は
vii)miRNA−7−5p分子、miRNA−7−5p isomiR、若しくはmiRNA−7−5p模倣体
である、請求項1に記載の組成物。 - miRNAのソースが、miRNAの前駆体であり、少なくとも50ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドである、請求項1又は2に記載の組成物。
- 前記miRNAが、配列番号51〜125、209、211、213、215、217、219、若しくは221のうちのいずれか1つと少なくとも70%の配列同一性を共有する、
及び/又は前記miRNAが、15〜30ヌクレオチド長である、
及び/又はmiRNAの前記ソースが、前記miRNAの前駆体であり、配列番号1〜16のうちのいずれか1つと、好ましくは配列番号1〜8のうちのいずれか1つと少なくとも70%の配列同一性を共有する、
請求項1〜3のいずれか一項に記載の組成物。 - さらなるmiRNA又はその前駆体をさらに含み、前記miRNAが、miRNA−193a、miRNA−323、miRNA−342、miRNA−520f、miRNA−520f−i3、miRNA−3157、及びmiRNA−7、又はそのisomiR、又はその模倣体からなる群から選択される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ジアミノ脂質が、一般式(I)(式中、T1、T2、及びT3が、それぞれ独立して、ファルネシル、ラウリル、トリデシル、ミリスチル、ペンタデシル、セチル、マルガリル、ステアリル、α−リノレニル、γ−リノレニル、リノレイル、ステアリジル、バクセニル、オレイル、エライジル、パルミトレイル、及び3,7,11−トリメチルドデシルからなる群から選択される)のものである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ジアミノ脂質が、一般式(I)(式中、nが1である)のものである、請求項1〜6のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ジアミノ脂質が、一般式(I)(式中、T1、T2、及びT3が、同一である)のものである、請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物。
- 好ましくはアドステロール、ブラシカステロール、カンペステロール、コレカルシフェロール、コレステンジオン、コレステノール、コレステロール、デルタ−7−スチグマステロール、デルタ−7−アベナステロール、ジヒドロタキステロール、ジメチルコレステロール、エルゴカルシフェロール、エルゴステロール、エルゴステノール、エルゴスタトリエノール、エルゴスタジエノール、エチルコレステノール、フシジン酸、ラノステロール、ノルコレスタジエノール、β−シトステロール、スピナステロール、スチグマスタノール、スチグマステノール、スチグマスタジエノール、スチグマスタジエノン、スチグマステロール、及びスチグマステノン、より好ましくはコレステロールからなる群から選択される、ステロールをさらに含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載の組成物。
- 好ましくはジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)、ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)、ジミリストイルホスファチジルコリン(DMPC)、ジラウロイルホスファチジルコリン(DLPC)、ジオレイルホスファチジルコリン(DOPC)、1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)、卵ホスファチジルコリン(EggPC)、ダイズホスファチジルコリン(SoyPC)、より好ましくはジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)からなる群から選択されるリン脂質をさらに含む、請求項1〜9のいずれか一項に記載の組成物。
- 水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲートをさらに含み、
i)水溶性ポリマーが、ポリ(エチレングリコール)(PEG)、ポリ(ヒドロキシエチル−l−アスパラギン)(PHEA)、ポリ−(ヒドロキシエチル−L−グルタミン)(PHEG)、ポリ(グルタミン酸)(PGA)、ポリグリセロール(PG)、ポリ(アクリルアミド)(PAAm)、ポリ(ビニルピロリドン)(PVP)、ポリ(N−(2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド)(PHPMA)、及びポリ(2−オキサゾリン)(POx)、好ましくはポリ(エチレングリコール)からなる群から選択され、
ii)親油性アンカーが、ステロール、脂質、及びビタミンE誘導体からなる群から選択される、
請求項1〜10のいずれか一項に記載の組成物。 - 前記ナノ粒子が、
i)20〜60モル%のジアミノ脂質、及び
ii)0〜40モル%のリン脂質、及び
iii)30〜70モル%のステロール、及び
iv)請求項11において規定されているような、0〜10%の水溶性ポリマーと親油性アンカーのコンジュゲート
を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の組成物。 - 医薬として使用するための、請求項1〜12のいずれか一項に記載の組成物。
- がんの処置、防止、遅延、又は軽快において使用するための、請求項13に記載の組成物。
- 免疫抑制腫瘍微小環境を下方調節することによって、がんの処置、防止、遅延、又は軽快において使用するための、請求項13若しくは14に記載の組成物、又は請求項1で規定した抗がんmiRNA。
- 前記抗がんmiRNAが、miRNA−193a、又はそのisomiR、模倣体若しくは前駆体である、請求項15に記載の組成物又は抗がんmiRNA。
- がん細胞におけるG2/Mアレストを促進又は増加させることにより、がんの処置、防止、遅延、又は軽快において使用するための、請求項15又は16に記載の組成物又は抗がんmiRNA。
- miRNAの細胞内取込みを刺激するためのin vivo、in vitro、又はex vivo方法であって、細胞を請求項1〜12のいずれか一項に記載の組成物と接触させるステップを含む方法。
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