JPS5959625A - Stabilization of tumor encrosis factor - Google Patents
Stabilization of tumor encrosis factorInfo
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- JPS5959625A JPS5959625A JP57172178A JP17217882A JPS5959625A JP S5959625 A JPS5959625 A JP S5959625A JP 57172178 A JP57172178 A JP 57172178A JP 17217882 A JP17217882 A JP 17217882A JP S5959625 A JPS5959625 A JP S5959625A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ガン壊死因子(以下、i’ N Fと略記す
る)の安定化法、詳しくは保存時、分離精製、凍結乾燥
などの操作を行なう際のi’ N Fの安定化法に関す
るものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention provides a method for stabilizing cancer necrosis factor (hereinafter abbreviated as i' N This paper relates to a method for stabilizing F.
本発明におけるT N Fとは、[網内系賦活化作用を
有する物質の1種または2種以上を哺乳動物に投与し、
次いでダラム陰性閑由来のエンドトキシンを注射するこ
とによって、または哺乳動物由来の活性化マクロファー
ジを含む組織培養系にダラム陰性菌由来のエンドトキシ
ンを加えることによって誘発される生理活性物質で、担
ガン動物に接種することにより、ある種のカンを壊死せ
しめる因子」と定義される物質である。TNFの特徴と
しては、ある種のガンを壊死せしめるばかりか、その作
用が種特異的でないことが知られている。たとえば、ウ
サキより得られたT N Fがマウスのガンを壊死せし
めることができる。さらに、TNFは団vitro
で正常細胞にはほとんど有害な作用を及ぼさず、ある種
のカン細胞(たとえば、マウスのガンに由来するL−M
細胞)を殺す能力をもつことか知られている。このよう
にT N Fは制ガン作用を有し、種に対し非特異的で
、正常細胞には作用しないことから制ガン剤として期待
される。In the present invention, TNF refers to [administration of one or more substances having a reticuloendothelial system activation effect to a mammal,
Tumor-bearing animals are then inoculated with bioactive agents induced by injection of endotoxin from Durham-negative bacteria or by adding endotoxin from Durham-negative bacteria to a tissue culture system containing activated macrophages of mammalian origin. It is a substance defined as "a factor that causes necrosis of certain types of cans by causing necrosis." It is known that TNF not only causes necrosis in certain cancers, but also that its action is not species-specific. For example, TNF obtained from rabbits can kill cancer in mice. In addition, TNF is a group in vitro
It has almost no harmful effect on normal cells, and some types of cancer cells (for example, L-M derived from mouse cancer)
It is known to have the ability to kill cells. As described above, TNF has an anticancer effect, is species-nonspecific, and does not act on normal cells, so it is expected to be an anticancer agent.
従来から、動物あるいは組織培養系中に誘発されるTN
Fの里は、非常に微量であることが知られている。T
N Fを制カン剤とし7て広く安全に使用するためには
、公庫1精製することが爪型であり、また溶液あるいは
凍結状態で長期保存したり、凍結乾燥を行なうことは、
i’ N Fを大量に工業的に製造する際に必須の操作
である。Traditionally, TN induced in animals or tissue culture systems
It is known that the amount of F no Sato is extremely small. T
In order to widely and safely use NF as an anti-convulsant agent, it must be purified in a nail-like form, stored in a solution or frozen state for a long period of time, or freeze-dried.
This is an essential operation when producing i' NF industrially in large quantities.
ところが本発明者らは、高純度のI’ N F溶液を保
存したり、凍結あるいは凍結+2燥を行なうと、活性が
著しく低下することを見いたした3、また、高純度のT
N Fの安定性について検:;」シた報告も今日まで
になされていない。このような実状では、その制カン効
果にもかかわらず、高純度のTNFを効率よく安定的に
工業的規模で提供することは不可能である。However, the present inventors have found that when a high-purity I'NF solution is stored, frozen, or frozen + 2-dried, the activity decreases markedly3.
To date, no reports have been made regarding the stability of NF. Under these circumstances, despite its anticancer effect, it is impossible to efficiently and stably provide high-purity TNF on an industrial scale.
本発明者らは、これらの現状に鑑み、T N Fの安定
化について鋭意研究を行なった。詰果、ある種の糖類お
よび糖類関連化合物を′rNFに添加することにより、
相当の期間保存しても、または、分前精製、凍結乾燥な
どの操作を行なっても、T N Fの活性が保持される
ことを見いたし、本発明を完成した。In view of these current circumstances, the present inventors conducted intensive research on stabilization of TNF. By adding stuffed fruits, certain sugars and sugar-related compounds to 'rNF,
It has been found that the activity of TNF is maintained even after storage for a considerable period of time, or even after operations such as preparative purification and lyophilization, and the present invention was completed based on this finding.
本発明は、TNFにD−グルコース、D −カラクトー
ス、D−キンロース、■〕−グルクロン酸、トレハロー
ス、デキストランおよO・ヒドロキシエチルデンプンか
ら選ばれた少なくとも1種の物質を添加することを特徴
とするT N Fの安定化法に関するものである。The present invention is characterized in that at least one substance selected from D-glucose, D-caractose, D-quinlose, [1]-glucuronic acid, trehalose, dextran, and O.hydroxyethyl starch is added to TNF. The present invention relates to a method for stabilizing TNF.
本発明に用いられるT N F原料は、公知の方法で生
産される。そのようなものとして、たとえば、Matt
llewsら、 Br、 J、 Cancer 、 4
2(1980) 416や、Greenら、 J、 N
a11. CancerInst、、59 (1977
)1519の方法が挙げられる。以下、その方法を説明
する。The TN F raw material used in the present invention is produced by a known method. As such, for example, Matt
llews et al., Br, J. Cancer, 4
2 (1980) 416, Green et al., J.N.
a11. CancerInst, 59 (1977
) 1519 methods are mentioned. The method will be explained below.
すなわち2、哺乳動物(たとえば、マウス、ウサギ、モ
ルモットなど)に網内系賦活化作用を有する物質の1種
または2種以上を静脈内または腹腔内に注射する。網内
系賦活化作用を有する物質としては、通常ダラム陽性菌
、原生動物または酵母が用いられ、生菌状態、死菌状態
(たとえば、熱処理やホルマリン処理後)または菌体抽
出成分として投与される3、
ここでダラム陽性菌としては、たとえば、1’ropi
onibacterium acnes (Coryn
cbン+cl:eriumparvum ) 、
Propionibacterium granu
losum(Corynel〕acLerium gr
anulosum )のようなPropionibac
Leria 、 Bacillus CalmeLL
e −Gu4rin (BCG )、MycobacL
crium smegmatisのようなMycoba
cteria、 Nocardia erythrop
olis。That is, 2. One or more substances having a reticuloendothelial system activating effect are injected intravenously or intraperitoneally into a mammal (eg, mouse, rabbit, guinea pig, etc.). Durum-positive bacteria, protozoa, or yeast are usually used as substances that activate the reticuloendothelial system, and are administered in a live state, a dead state (for example, after heat treatment or formalin treatment), or as a bacterial cell extract component. 3. Durham-positive bacteria include, for example, 1'ropi
onibacterium acnes (Coryn
cbn+cl:eriumparvum),
Propionibacterium granu
losum(Corynel)acLerium gr
Propionibac such as anulosum)
Leria, Bacillus CalmeLL
e-Gu4rin (BCG), MycobacL
Mycoba like crium smegmatis
cteria, Nocardia erythrop
olis.
Nocardia gardneriのようなNoca
rdiasが挙げられる。原生動物としては、たとえは
マラリア原虫、トキソプラズマが挙げられる。酵母の場
合、通常 Saccharomyces cercvi
siaeなどから抽出したZymosanが用いられる
。また、ピランコーポリマーのような合成高分子化合物
を用いることもできる。Noca like Nocardia gardneri
Examples include rdias. Examples of protozoa include malaria parasites and toxoplasma gondii. For yeast, usually Saccharomyces cercvi
Zymosan extracted from siae etc. is used. Moreover, synthetic polymer compounds such as pyran copolymers can also be used.
網内系賦活化作用を有する物質の投与後7〜14日後に
ダラム陰性菌より得られたエンドトキシン、たとえば、
大腸菌、緑IIl′!l閑、チフス閑由来のりポポリザ
ツカライドを該”ili乳動物の静脈内に注射する。注
射後1.5〜2時間後に該哺乳動物の体液(たとえば、
腹水、リンパ液なと)および/または血清もしくは血漿
を得るか、または該動物の肝臓、牌1藏等の1藏器を均
一に破砕し、生理食塩水で抽出してT N rr rs
p料を得る。。Endotoxin obtained from Durham-negative bacteria 7 to 14 days after administration of a substance that has a reticuloendothelial system activation effect, for example,
E. coli, green IIl'! 1. Polypolyzatucaride derived from typhoid fever is injected intravenously into the mammal. 1.5-2 hours after the injection, the mammal's body fluids (e.g.
Ascitic fluid, lymph fluid, etc.) and/or serum or plasma can be obtained, or one organ such as the liver, one tile, etc. of the animal can be homogeneously crushed and extracted with physiological saline.
Get p fee. .
本発明に用いられるT N F原料の生産方法は、上記
に限られるものではない。すなわち、細胞培養法のよう
なTNF原料生産法も採用できる。The method for producing the TN F raw material used in the present invention is not limited to the above. That is, a TNF raw material production method such as a cell culture method can also be adopted.
このようにして生産されたT N F原料は、通常の生
化学的分離精製方法を組み合わせて分子l+精製される
。そのようなものとして、たとえば、硫酸アンモニウム
による塩析法、陰イオン交換圏脂によるイオン交換クロ
マトグラフィー、ゲル1濾過法、電気泳動法などが挙げ
られる。これらの方法を組み合わせて、分離精製工程を
進めて精製度を上げていくと、TNFは次第に不安定と
なる。たとえば比活性(1mgの総蛋白質中に含まれる
T N Fの活性、活性の単位は後述)50万単位/
mgまで精製したTNF試料は、実施例に示すように非
常に不安定である。比活性がこれより低いT N F試
料も程度の差はあるが、保存したり、凍結、凍結乾燥な
との操作により、その活性が低下する。本発明の対象と
なるものは、このように精製度が」二かり不安定となっ
たT N Fであり、溶液および粉末のいずれてもよい
か、持にTNFを含有する溶液である。The TNF raw material produced in this way is purified using a combination of conventional biochemical separation and purification methods. Examples of such methods include salting out using ammonium sulfate, ion exchange chromatography using anion exchange fat, gel 1 filtration, and electrophoresis. When these methods are combined to advance the separation and purification process to increase the degree of purification, TNF gradually becomes unstable. For example, specific activity (activity of TNF contained in 1 mg of total protein, unit of activity will be described later) 500,000 units/
TNF samples purified to mg are very unstable, as shown in the Examples. TNF samples with specific activities lower than this also have their activity reduced to varying degrees by storage, freezing, lyophilization, and other operations. The object of the present invention is TNF which has become unstable due to the degree of purification as described above, and may be either a solution or a powder, or a solution containing TNF.
本発明で用いられるT N Fを含有する溶液の1)
Hは5〜10に保たれていることか好ましく、適当な緩
衝液で調整されていることがより好ましい。そのような
緩衝液としては、たとえば、リン酸FtU Ilj液、
トリス[tris (hydroxy+ncl、hyl
)a m i n n1ne t h a n eコー
塩酸緩衝液などが挙げられる。目的によっては塩を加え
る場合もある。用いられる塩としては、塩化ナトリウム
、塩化カリウムなとがあり、その濃度は目的によって決
定される。たとえば、注射用として用いる場合には、塩
化ナトリウムを0.15Mになるように加え等弓長液と
する。1) of the solution containing TNF used in the present invention
It is preferable that H is maintained at 5 to 10, and more preferably adjusted with an appropriate buffer. Such buffers include, for example, phosphate FtU Ilj solution,
tris (hydroxy+ncl, hyl
) aminn1nethaneco-hydrochloric acid buffer and the like. Depending on the purpose, salt may be added. Salts used include sodium chloride and potassium chloride, and the concentration thereof is determined depending on the purpose. For example, when used for injection, sodium chloride is added to the solution to a concentration of 0.15M to form an equi-arcuous solution.
本発明で用いられる物質(以下、本発明の物質と記す)
のうち、D−グルコース、■)−カラクトース、D−キ
シロース、D−’/”ルクロン酸およびトレハロースの
場合には、これらへリン酸エステルまたはその塩、酢酸
エステル、メチルエーテル、メチル配糖体なとの誘導体
もまたT N F安定化効果を有するので、本発明方法
にはこれらの誘導体を添加する方法も含まれる3゜また
、D−グルクロン酸の場合には、ナトリウム塩、カリウ
ム塩のようなアルカリ金属塩およびカルシウム塩、マグ
ネシウム塩のようなアルカリ土類金FA f4iも含ま
れる。ヒドロキシエチルデンプンとしては、平均分子@
300 Of1〜400000のものが用いられるか
、平均分子量20000 。Substances used in the present invention (hereinafter referred to as substances of the present invention)
Among them, in the case of D-glucose, ■)-caractose, D-xylose, D-'/''lucuronic acid and trehalose, these phosphoric acid esters or salts thereof, acetic esters, methyl ethers, methyl glycosides, etc. Since derivatives of D-glucuronic acid also have a TNF stabilizing effect, the method of the present invention also includes a method of adding these derivatives. Also included are alkaline earth gold FA f4i such as alkali metal salts and calcium and magnesium salts.As hydroxyethyl starch, the average molecule @
300 of 1 to 400,000 or an average molecular weight of 20,000.
のものが好ましい。デキストランとしては、平均分子量
10000〜80000のものが好ましく、たとえは、
デキストラン]、 0 、40 、70 (それぞれ平
均分子量100 (10、40000、700(10)
が挙げられる。これらの物質のうちではトレハロースが
もっとも好ましい。Preferably. The dextran preferably has an average molecular weight of 10,000 to 80,000, for example,
Dextran], 0, 40, 70 (average molecular weight 100 (10, 40000, 700 (10), respectively)
can be mentioned. Among these substances, trehalose is most preferred.
本発明の物質は単独で、あるいは2種以−にを適宜組み
合わせて使用することが1きる。The substances of the present invention can be used alone or in an appropriate combination of two or more.
本発明の1勿質の添加濃度は、T N Fを含有する溶
液1 mlあたり10 mg以上、より好ましくは10
0 mg以上である。添加濃度の」二限は常識的、経済
的観点から決められ、同溶液1ml あたり500 m
gである。なお、”FNFを含有する粉末に添加する場
合の本発明の物質の添加量は、該粉末を溶解した際に、
上記の溶液濃度になるように選ばれる。The additive concentration of the present invention is 10 mg or more, more preferably 10 mg per ml of solution containing TNF.
0 mg or more. The two limits of additive concentration are determined from common sense and economical viewpoints, and are 500 m/ml of the same solution.
It is g. The amount of the substance of the present invention to be added to powder containing FNF is as follows:
The solution concentration is chosen as above.
添加方法は特に限定されないが、たとえば、本発明の物
質の粉末を直接T N F含有溶液に添加する方法、あ
らかじめ同粉末を水あるいは適当な緩衝液に溶解して添
加する方法、または同粉末をTNF含有粉末と混合せし
めて添加する方法が挙げられる。添加時期は分Ill精
製過程であっても、製剤化工程であってもよい。The method of addition is not particularly limited, but for example, the powder of the substance of the present invention may be directly added to the TNF-containing solution, the powder may be dissolved in water or an appropriate buffer solution beforehand, or the powder may be added to the TNF-containing solution. An example of this method is to mix it with a TNF-containing powder and add it. The timing of addition may be during the minute purification process or during the formulation process.
本発明の物質を2種以上添加する場合には、該物質の合
計量が、先に述べた添加濃度および量になるように調整
すればよい。When two or more types of substances of the present invention are added, the total amount of the substances may be adjusted so that the concentration and amount of the substances added are as described above.
このように本発明の物質を添加した’I’ N Fを含
有する溶液は、溶液状態のままでは0〜30”c %よ
り好ましくは0〜10 T、:で保存あるいは分離精製
、製剤化操作をすることが好ましい。In this way, the solution containing 'I' NF to which the substance of the present invention has been added is stored at a temperature of 0 to 30"c %, preferably 0 to 10 T, or subjected to separation, purification, and formulation operations in its solution state. It is preferable to do so.
また、同溶液を凍結状態で保存する場合はO″CC以下
り好ましくは−20”C以下とすることが望ましい。本
発明の物質を添加したT N Fを含有する溶液では、
溶液状態または凍結状態での保存中あるいは分離精製、
製剤化操作中にもT N Fの活性は保持される。Furthermore, when the same solution is stored in a frozen state, it is desirable that the temperature be below O''CC, preferably below -20''C. In a solution containing TN F to which the substance of the present invention has been added,
storage in solution or frozen state or separation and purification;
The activity of TNF is maintained during the formulation process.
T N Fの活性測定には、in vivoで腫瘍壊死
効果を測定する方法と、in vitroでガン細胞を
殺す効果を測定する方法がある。There are two ways to measure the activity of TNF: one is to measure the tumor necrosis effect in vivo, and the other is to measure the cancer cell killing effect in vitro.
in vivo法としては、たとえば、Carswel
lらの方法、 Proc、 Nat、 Acad、 S
ci、 USA 、 72(1975)3666が挙げ
られる。この方法は、移植した八4eth A sar
comaによる腫瘍を T N Fが壊死させる効果を
測定するものである。すなわち、(BALB/c X
C57BL/6 ) F lマウスの腋下部皮肉に2×
10 コのMeLllA sarcom;+ Ill胞
を移植する。7日後、移植した腫瘍の大きさが直径7〜
8 +nmとなり、出血性壊死などがなく良好な血行状
態にあるマウスを選び、尾静脈より生理食塩水で希釈し
た0、5 ml (7)TNF試料を注射し、24時間
後に次の判定基準により判定を行なう、。In vivo methods include, for example, Carswel
The method of l et al., Proc, Nat, Acad, S
ci, USA, 72 (1975) 3666. This method is suitable for transplanted 84eth A sar
This test measures the effect of TNF on necrosis of coma-induced tumors. That is, (BALB/c
C57BL/6) F l Mouse armpit region ironically 2×
10 MeLllA sarcom; + Ill cells are transplanted. After 7 days, the size of the transplanted tumor was 7 to 7 days later.
8+ nm, with good blood circulation without hemorrhagic necrosis, etc., were selected, and 0.5 ml of the TNF sample diluted with physiological saline was injected into the tail vein, and 24 hours later, the mice were evaluated according to the following criteria. Make a judgment.
(−) :変化なし
く±):かすかな出血性壊死
(11) :中程度の出血性壊死(移植カン表面の真中
から50%以上にわたって壊死)
(m、) :顕著な出血性壊死(移植ガンの中央部が重
度に壊死し、周囲のガン組織がわ
ずかに残った状態)
団v i I: r O法によるT N F活性側定番
、1、たとえば゛、 Rufr ら r I−ym
plo+ki++cs、Vol、2. (td、by
E。(-): No change ±): Faint hemorrhagic necrosis (11): Moderate hemorrhagic necrosis (necrosis extending over 50% from the center of the graft surface) (m,): Significant hemorrhagic necrosis (graft The central part of the cancer is severely necrotic, with only a small amount of surrounding cancer tissue remaining) Group vi I: TNF active side standard by r O method, 1, for example, ゛, Rufr et al r I-ym
plo+ki++cs, Vol, 2. (td, by
E.
Pick、Δcademic Press、 N、Y、
(1り80 )2 :l 5 l、あるいはKull
らl J、 Innnunol、、 I 2fi(]!
18+)127り]の方法か挙けられる、。Pick, Δacademic Press, N, Y,
(1ri80) 2 :l 5 l, or Kull
L J, Innnunol,, I 2fi(]!
18+) 127] methods can be mentioned.
本発明者らが用いている方法は、これらを改良したもの
であり、T N FがL M、fll+胞(アメリカ
ン・タイプ・カルチャー・コレクション。The method used by the present inventors is an improvement on these, in which TNF is LM, fl1+ cells (American Type Culture Collection).
cct、 1.2 )を殺す効果を測定するものであ
る。cct, 1.2).
すなわち、順次培地で希釈したi’ N F試料01m
1とl Oコ/mlの濃度のIl、−M、?IIl胞の
培地懸濁液0.1mlを96穴の組織培養用マイクロプ
レート(フロー・ラボラトリ−社)に加える。培地ハl
Ov/v%のウシ胎児血l肖を含むイーグルのミニマ
ム・エンセンシャル培地(その組成は、たとえは、1−
組織培養−1中井準之助他編集1、朝倉摺店、1967
年に記載されている)を用いる6゜マイクロプレートを
5%の炭酸ガスを含む空気中、:37 ”Cで48時間
培養する。培養終了後、グルタルアルデヒド2 (17
zlを加え411胞を固定する3、固定後、マイクロプ
レートを洗浄、乾燥して、0.05%メチレンブルー溶
液を0.1. +nl加え、生き残った細胞を染色する
。余分なメチレンブルーを洗い流し乾燥した後、残った
メチレンプル=り3%塩酸溶液で抽出し、ぞの(i (
i 5聞1における吸光度をクイクーチツク・マルチス
キャン(フロー・ラボラi・リー社)で測定する1、こ
の吸光度は、生き残った細胞数に比例するfl ’I’
NF試料を加えない対照の吸光度の50%の値に相当す
るT N F試料の希釈率を、グラフあるいは計算によ
って求め、その希釈率を!11位(U) /inlと定
義する。以下、本発明におけるT N Fのin vi
tro活性は、すべてこの単位で表示される。That is, i' NF sample 01m sequentially diluted with culture medium.
1 and Il, -M, ? with a concentration of 1 O/ml. Add 0.1 ml of culture medium suspension of IIl cells to a 96-well tissue culture microplate (Flow Laboratory). medium ha
Eagle's Minimum Essential Medium containing Ov/v% bovine fetal blood serum (its composition is, for example, 1-
Tissue Culture-1 Edited by Junnosuke Nakai et al. 1, Asakura Suriten, 1967
Incubate a 6° microplate for 48 hours at 37"C in air containing 5% carbon dioxide. After incubation, add glutaraldehyde 2 (17
Add zl and fix 411 cells. 3. After fixation, wash and dry the microplate, and add 0.1% 0.05% methylene blue solution. +nl to stain surviving cells. After rinsing away excess methylene blue and drying, the remaining methylene blue was extracted with a 3% hydrochloric acid solution and
Measure the absorbance at 1 in 5 minutes using a Quikuchik Multiscan (Flow Laboratories, Inc.) 1. This absorbance is proportional to the number of surviving cells fl 'I'
Determine by graph or calculation the dilution rate of the TNF sample that corresponds to 50% of the absorbance of the control without the addition of the NF sample, and calculate that dilution rate! 11th place (U) Defined as /inl. Hereinafter, in vitro analysis of T N F in the present invention will be described.
All tro activities are expressed in this unit.
本発明の方法によれば、制ガン剤として期待されている
TNFを溶液、凍結、凍結乾燥状態での保存や、分離精
製、製剤化操作の際にもその活性は保持されるので、高
純度のT N Fを効率よく安定的に工業的規模で提供
することが可能となる。また、人体に投与しても安全で
、′FNFを制ガン剤として用いる際にきわめて汀利で
ある。According to the method of the present invention, the activity of TNF, which is expected to be an anticancer agent, is maintained even when it is stored in a solution, frozen, or lyophilized state, and during separation and purification and formulation operations. It becomes possible to efficiently and stably provide NF on an industrial scale. Furthermore, it is safe to administer to the human body, and is extremely advantageous when FNF is used as an anticancer agent.
次に、実施例によって本発明をさらに詳細に説明する1
、。Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples 1.
,.
実施例1
比活性500000 U/mgであるウザキ゛由来のT
N Fを用いて、100OU/mlの活性を有するT
N F溶液(0,15M塩化ナトリウムを含む0.1
Mリン酸緩衝液pH7,0)を調製した。このTNF
溶液にD−グルコース、D−ガラクトース、D−キシロ
ース、D−グルクロン酸ナトリウム、トレハロース、デ
キストラン10、テキストランフ0およびヒドロキシエ
チルデンプン(平均分子量約20000(1) (HE
S 、味の素製)を100 mg/mlおよび:30
0 mg/mlになるように添加し、4℃で保存し、経
時的(2日、7日。Example 1 T from Uzaki with a specific activity of 500,000 U/mg
Using NF, T with an activity of 100OU/ml
NF solution (0.1 containing 0.15 M sodium chloride)
M phosphate buffer pH 7.0) was prepared. This TNF
D-glucose, D-galactose, D-xylose, sodium D-glucuronate, trehalose, dextran 10, Textrumf 0 and hydroxyethyl starch (average molecular weight approximately 20,000(1) (HE) were added to the solution.
S, manufactured by Ajinomoto) at 100 mg/ml and: 30
It was added to a concentration of 0 mg/ml, stored at 4°C, and stored over time (2 days, 7 days.
30日日月に、本明細書中に記載したin vitr。In vitro, as described herein, on the 30th.
およびin vivo評価法で残存活性を測定した。And residual activity was measured using an in vivo evaluation method.
in vitro法の場合は、得られた測定値より残存
活性率(%)を算出した。結果は、実施例2の結果と共
に表1に示す。In the case of the in vitro method, the residual activity rate (%) was calculated from the obtained measured values. The results are shown in Table 1 together with the results of Example 2.
なお、in vivo法の場合は、該処理溶液を限外p
過濃縮装置、ミニモジr−−ルNM−3(旭化成工業製
、フナコシ薬品販売)で30倍濃縮した後、1群5匹の
担カンマウスの尾静脈に1匹あたり0.5 ml投与し
、投与後24時時間区判定基準に則り評価した。たたし
、テキストランおよびヒドロキシエチルデンプン添加の
場合には、所定の濃度まで濃縮できないので残存活性は
測定しなかった。In addition, in the case of the in vivo method, the treatment solution is
After concentrating 30 times using a superconcentration device, Mini Mojir NM-3 (manufactured by Asahi Kasei Kogyo, sold by Funakoshi Pharmaceutical), 0.5 ml per mouse was administered into the tail vein of 5 caged mice per group. Evaluation was made in accordance with the 24-hour time zone criteria. However, in the case of Textlan and hydroxyethyl starch addition, the residual activity was not measured because it was not possible to concentrate to a predetermined concentration.
実施例2
実施例1で用いたと同様の活性濃度を有する’f’ N
F溶液に、実施例1て用いた各種本発明の物質を]、
OOmg/mlおよび300 mg/mlになるよう
に添加し、凍結(−70℃)と融解を繰り返しく1回、
3回)、その残存活性を団v i t r’。Example 2 'f'N with active concentration similar to that used in Example 1
In the F solution, various substances of the present invention used in Example 1],
Add to OOmg/ml and 300 mg/ml and repeat freezing (-70°C) and thawing once.
3 times), and its residual activity was collected.
評価法で測定した。結果を残存活性率(%)の形で表1
に示す。It was measured using an evaluation method. Table 1 shows the results in the form of residual activity rate (%).
Shown below.
実施例3
実施例1で用いたと同様の活性濃度を有するT N F
溶液に各種濃度のトレハロースを添加し、4パCで7日
間保存した後のT N F残存活性をi n v i
t r o評価法で測定し、その値に基づいて残存活性
率(%)を算出した。結果を図面に示す。Example 3 TN F with active concentration similar to that used in Example 1
The residual TNF activity after adding various concentrations of trehalose to the solution and storing it at 4-PaC for 7 days was determined by i.v.i.
It was measured by the t ro evaluation method, and the residual activity rate (%) was calculated based on the value. The results are shown in the drawing.
(以下余白)
比較例
本発明の物質として、D−グルコース、D −グルクロ
ン酸ナトリウム、トレハロースおよびヒドロキシエチル
デンプンを用い、比較添加物として、通常の生理活性物
質の溶液安定化剤としてよく知られている各種糖類およ
び糖類関連化合物を用いた。(Left below) Comparative Example D-glucose, sodium D-glucuronate, trehalose, and hydroxyethyl starch were used as the substances of the present invention, and as comparative additives, D-glucose, sodium D-glucuronate, trehalose, and hydroxyethyl starch were used. Various saccharides and saccharide-related compounds were used.
実施例1で用いたと同様の活性濃度を有するT N F
溶液に、」二記添加物を10 mg/′mlまたは20
0 +ng/mlになるように添加し、4Cで7日間保
存した後のTNF残存活性をin vitro評価法で
測定し、その値に基づいて残存活性率(%)を算出した
。結果を表2に示す。TN F with an active concentration similar to that used in Example 1
Add 10 mg/'ml or 20 mg/'ml of additives to the solution.
0 + ng/ml and stored at 4C for 7 days, the residual TNF activity was measured by an in vitro evaluation method, and the residual activity rate (%) was calculated based on the value. The results are shown in Table 2.
(ムス −ト 余 白)
表2 比 較 例
以上の実施例、比較例から明らかなように、本発明の安
定化法によれば、溶液状態での保存、凍結、融解などの
操作時において、T N Fのl6性を安定的に保持す
ることが可能である。(must margin) Table 2 Comparative Examples As is clear from the above examples and comparative examples, according to the stabilization method of the present invention, during operations such as storage in a solution state, freezing, and thawing, It is possible to stably maintain the l6 character of TNF.
図面はトレハロースの各種添加濃度に対する4゛C7日
間保存後の1” N F in viLro残存活性
率の関係を示すグラフである3、
特許出願人 大日本製薬株式会社
// 旭化成工業株式会石
代理人 坪井有四部
特許出願人 人日本製薬株式会社The figure is a graph showing the relationship between the residual activity of 1"N F in viLro after storage for 7 days at 4°C with respect to various additive concentrations of trehalose. Yushibe Tsuboi Patent applicant Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.
Claims (1)
−キシロース、D−1”ルクロン酸、トレハロース、デ
キストランおよびヒドロキシエチルデンプンから選ばれ
た少なくとも1種の物質を添加することを特徴とするガ
ン壊死因子の安定化法。Can necrosis factors include D-glucose, D-galactose, and D
- A method for stabilizing cancer necrosis factor, which comprises adding at least one substance selected from xylose, D-1'' lucuronic acid, trehalose, dextran, and hydroxyethyl starch.
Priority Applications (7)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57172178A JPS5959625A (en) | 1982-09-28 | 1982-09-28 | Stabilization of tumor encrosis factor |
| US06/524,540 US4457916A (en) | 1982-08-31 | 1983-08-19 | Method for stabilizing Tumor Necrosis Factor and a stable aqueous solution or powder containing the same |
| IT67886/83A IT1200970B (en) | 1982-08-31 | 1983-08-23 | PROCEDURE FOR STABILIZING A FACTOR WITH A NECROTIZING EFFECT ON CANCERS AND A STABLE AQUOUS SOLUTION OR POWDER CONTAINING IT |
| DE3331003A DE3331003C2 (en) | 1982-08-31 | 1983-08-27 | Process for stabilizing the tumor necrosis factor and aqueous solution or powder substance containing it |
| ES525228A ES8706446A1 (en) | 1982-08-31 | 1983-08-30 | Method for stabilizing Tumor Necrosis Factor and a stable aqueous solution or powder containing the same |
| FR8313971A FR2532178B1 (en) | 1982-08-31 | 1983-08-31 | PROCESS FOR STABILIZING THE TUMOR NECROSIS FACTOR AND STABLE AQUEOUS OR POWDER SOLUTION CONTAINING THE FACTOR |
| GB08323271A GB2126588B (en) | 1982-08-31 | 1983-08-31 | A method for stabilizing tumor necrosis factor and a stable aqueous solution or powder containing the same |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57172178A JPS5959625A (en) | 1982-09-28 | 1982-09-28 | Stabilization of tumor encrosis factor |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5959625A true JPS5959625A (en) | 1984-04-05 |
| JPH0314291B2 JPH0314291B2 (en) | 1991-02-26 |
Family
ID=15937016
Family Applications (1)
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Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5959625A (en) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0166996A1 (en) | 1984-06-07 | 1986-01-08 | Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha | A method for stabilizing a physiologically active substance produced by recombinant DNA technique and a stable aqueous solution or powder containing the same |
| JPS62501562A (en) * | 1985-02-01 | 1987-06-25 | ニユ−ヨ−ク ユニバ−シイテイ | Method for purifying antihemophilic factor |
| JPS63146827A (en) * | 1986-07-18 | 1988-06-18 | Chugai Pharmaceut Co Ltd | Stable granulocyte colony stimulating factor-containing preparation |
| US5026772A (en) * | 1987-09-01 | 1991-06-25 | Yamanouchi Pharmaceutical Co., Ltd. | Lyophilized pharmaceutical composition of neocarzinostatin derivative |
| JP2004256545A (en) * | 2000-02-08 | 2004-09-16 | Allergan Inc | Pharmaceutical composition of botulinus toxin |
-
1982
- 1982-09-28 JP JP57172178A patent/JPS5959625A/en active Granted
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| EP0166996B2 (en) † | 1984-06-07 | 1994-12-21 | Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha | A method for stabilizing a physiologically active substance produced by recombinant DNA technique and a stable aqueous solution or powder containing the same |
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Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0314291B2 (en) | 1991-02-26 |
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