JP4836957B2 - ワクチンとしての、組換えマイコバクテリウムおよび生物学的に活性な作用剤の組合せ - Google Patents
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Description
a)配列番号1において示されるヌクレオチド211〜1,722を含むヌクレオチド配列;b)a)に由来する配列と同じアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列;および
c)a)またはb)に由来する配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列
を含む群より選択される核酸分子によってコードされる。
a)哺乳動物において免疫応答を誘発することができる、ポリペプチドに由来する少なくとも1つのドメイン、および
b)ファゴリソソーム脱出ドメイン
を含む。
-ファゴリソソーム脱出ペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む細菌細胞を第1の構成要素として提供する段階;
-生物学的に活性な作用剤を第2の構成要素として提供する段階;ならびに
-第1の構成要素および第2の構成要素を1つの薬学的組成物に製剤化する段階
を含む方法によって解決される。
-ファゴリソソーム脱出ペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む細菌細胞を第1の構成要素として提供する段階;
-生物学的に活性な作用剤を第2の構成要素として提供する段階;ならびに
-第1の構成要素および第2の構成要素を別々に製剤化する段階
を含む方法によって解決される。
本実施例において、腫瘍ワクチンに対するアジュバントとしてのBKGの適性を判定するための実験を説明する。本明細書において言及するBKGは、リステリア・モノサイトゲネスに由来するファゴリソソーム脱出ペプチド(Hly)を発現し、かつさらに、ureCを欠損している。このような改変BCGは、本明細書においてrBCG:ΔureC:Hlyとも呼ばれる。
以下の細胞株を使用した:J558mOVA(OVAを発現し、かつ細胞膜にそれが結合しているJ558細胞)、J558sOVA(OVAを発現し、かつ環境中にそれを分泌するJ558細胞)、およびEL-4OVA(OVAを発現しているEL-4細胞)。最初に、細胞培養物をG418選択圧下で14日間維持した。マイコプラズマ試験は陰性であった。初期継代培養により細胞数を増加させた後、これら3種の細胞株をDMSOと共に10×106個ずつ凍結し、かつ、動物内で最初に使用する前に少なくとも7日間、液体窒素中で保存した。
使用する細菌は、BKG(rBCG ΔureC:Hly)と呼び、さらに「BKG」と記載する。BKGを7H9完全培地中で増殖させ、かつ10%グリセロール/PBS中で凍結した。これらの細菌は、解凍し、かつ一度再凍結することができた(ただし、先に希釈をしていない場合のみ再凍結することができた)。
凍結細胞を解凍し、かつ滅菌DMEM培地中で2回洗浄した。続いて、細胞を滅菌DMEM中に再懸濁し、かつ計数した。注射液の総体積は、100μlであった(表1に従って調製)。注射前に、滅菌シリンジ中で細胞に放射線照射した(150Gyγ放射線)。インビトロの対照:それぞれ放射線照射前および放射線照射後の解凍細胞から、細胞株あたり1つのアリコートを取り出し、細胞培養物中に入れた。これらの対照は、解凍後良好な回復を示し(非放射線照射細胞)、および、放射線照射後14日を超える期間、細胞増殖はまったく示さなかった。
12週齢の雌C57/B6(6週齢の時点で引き渡され、試験を実施する実験室に6週間順応させられた);ワクチン皮下接種100μl;25Gの針;尾の基部;7日後に免疫モニタリング(OVAに対するテトラマー)のために血液0.3mlを全身麻酔下で採取。マウスの使用法は、それぞれの管轄官庁によって承認された。
0日目 初回ワクチン接種(初回抗原刺激)
7日目 1回目の血液採取
28日目 1回目の追加免疫ワクチン接種(1回目の追加免疫)
35日目 2回目の血液採取
53日目 2回目の追加免疫ワクチン接種(2回目の追加免疫)
60日目 3回目の血液採取
74日目 腫瘍攻撃接種
・ワクチン群(+BKG)(n=9):サブグループ1.1番、1.3番、および1.5番(表1を参照されたい)
・ワクチン群(-BKG)(n=9):サブグループ1.2番、1.4番、および1.6番
・対照群(n=2):サブグループ1.7番
S2条件、IVCケージ、2ケージ;3〜4日間隔で変更。
盲検様式でSIINFEKELに特異的なT細胞の量を検出するために、FACS試験を実施した。細胞成分を選別した後、血漿を凍結し、かつさらなる評価のために-80℃で保存した。
細胞培養
ワクチン接種および腫瘍攻撃接種のための細胞を作製
動物実験の範囲内で使用される細胞のインビトロの対照
テトラマーを生成する、FACS実験において対照として使用される細胞の細胞培養物
ベクター学(Vectorology)
IL-2、IFNγ、およびOVAの組換え用のベクター(SINベクター)を設計した。このベクターは、LNCaP-IL-2-IFNγ細胞に対応するマウス腫瘍細胞株を作製するために使用する。
免疫学的モニタリングの第1の結果は、図1に示すように、アジュバント無しの動物群においてよりも、アジュバントとしてBKGを有するマウスの群において、より大量のT細胞がOVAペプチドを認識できる傾向があることを示す。これは、BKGが、ワクチンに対する免疫学的応答を増強する、腫瘍ワクチン接種に対するアジュバントであることを裏付ける。
以下は、本明細書において開示する基本的な治療計画を当業者が最適化できるようにするための、実施例1で概説した治療概念の投与計画を最適化するためのプロトコールである。材料および方法は、そうではないという記載が無い限り、上記の実施例1に関連して概説したとおりである。
IL-2、IFNγ、および卵白アルブミンを発現する、安定に三重にトランスフェクトされたJ558(H2Kb)細胞株を用いて、これらの細胞の3種の異なる用量、すなわち5×106個の細胞、10×106個の細胞、および15×106個の細胞をマウス(C57BL/6(H2Kb))に注射する。各投与量に対して、マウスの群は5匹の動物からなり、かつそれらの注射スキームは以下のとおりである:初回免疫処置および30日毎に3回の追加免疫;この際、注射はBKG(1×106CFU)を併用して、または併用せずに実施する。これらの動物が、卵白アルブミンに特異的な免疫応答、および特にBKGによって媒介される免疫応答の増加を示すか否か、免疫学的に検査する。
この試験は、一連の予備実験(「予備実験1〜7」)および4つの主要な実験(「実験1〜4」)からなる。
マウス(C57BL/6(H2Kb))5匹からそれぞれなるマウス群合計14群を、投与量を段階的に上げたワクチン接種用腫瘍で免疫化する(14群の各2匹に同じ投与量のワクチン接種用腫瘍を与える)。ワクチン接種用腫瘍は、卵白アルブミンを発現する放射線照射された同種異系J558腫瘍細胞(H2Kb)からなり、これらは皮下注射される。7つの群において、腫瘍細胞と共にBKGを1×106CFUの投与量で注射する。1週間後、ならびに5週、9週、および13週間後、これらの動物から血液0.5mlを採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色を用いて卵白アルブミンに特異的な免疫反応を試験する。BKGを併用する、または併用しない、合計7種の異なる細胞投与量のワクチン接種用腫瘍を使用する。各投与量は、0.1×106、0.5×106、1.0×106、5.0×106、10.0×106、50.0×106、100×106であり、ヒトにおける臨床試験での対応する使用投与量の好ましい範囲は、10×106〜300×106細胞である。合計2つの対照群のマウスには、ワクチン接種用腫瘍を与えない。対照群の1つにはBKG注射を施す。
この試験では、マウス(C57BL/6(H2Kb))4群に、投与量を段階的に上げた試験腫瘍(B16OVA黒色腫、皮下注射)を与える。腫瘍体積が2cmに達するまで腫瘍増殖をモニターする。この腫瘍体積に到達したら、マウスを安楽死させ、インビトロ解析のために血液材料および腫瘍材料を回収し、かつ保存する。腫瘍増殖が認められない場合には、12週後にマウスを屠殺する。この場合も、各群は5匹のマウスからなり、その際、試験腫瘍の4種の異なる細胞投与量、すなわち1.0×106個の細胞、5×106個、10.0×106個、および50.0×106個の細胞を使用する。
予備実験1において特定した投与量に基づいて、BKGの投与量を変動させ、その際、アジュバントの投与量は、予備実験1において使用される投与量と比べて、10倍、100倍、および1000倍、ならびに0.1倍、0.01倍、および0.001倍変動させる。1週間後、ならびに5週、9週、および13週間後、これらの動物から血液0.5mlを採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色を用いて卵白アルブミンに特異的な免疫反応を試験する。
予備実験1で決定されるワクチン接種用腫瘍細胞の投与量および予備実験3で決定されるBKG投与量は、投与様式に応じて変動する。投与様式は、静脈内、皮内、腹腔内、および同側の皮下である。各投与様式に対して、BKGの投与量は、予備実験3で定義される投与量の1倍、0.1倍、または0.01倍のいずれかである。本明細書において試験する投与様式は、ヒトでの潜在的な臨床使用に類似しており、かつアジュバントと最初に接触する免疫系の区画に関しては異なっている。1週間後、ならびに5週、9週、および13週間後、これらの動物から血液0.5mlを採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色を用いて卵白アルブミンに特異的な免疫反応を試験する。
予備実験1で定義されるワクチン接種用腫瘍細胞の投与量および予備実験3で決定されるBKG投与量を用いて、以下の免疫化スキームを検討する:
1.免疫化スキーム1:ワクチン接種用腫瘍およびアジュバントを1回同時注射(対照群)
2.免疫化スキーム2:このスキームは、麻疹のようないくつかの疾患の予防的免疫化に相当する。3回の基本的な免疫化および追加免疫を実施し、その際、基本的な免疫化は開始時、2週間後、および4週間後に実施し、かつ追加免疫は、さらに6週間後に投与される。
3.免疫化スキーム3:このスキームは、ワクチン接種間隔の異なるワクチンの現行の適用に付随する治療的ワクチン接種のために極めて重要であることが判明したスキームに相当する。より具体的には、以下の3つのサブスキームを定義することができる。
免疫化スキーム3a:3週間毎にワクチン接種(12週間後に最終の血液試料採取および安楽死)
免疫化スキーム3b:6週間毎にワクチン接種(25週間後に最終の血液試料採取および安楽死)
免疫化スキーム3c:12週間毎にワクチン接種(43週間後に最終の血液試料採取および安楽死)
合計12群のTRAMPマウス(Jackson Laboratory株番号003135)に、説明書で定義されているTRAMP-C1ワクチン接種用腫瘍細胞の投与量(5×106細胞)の0.1倍、1倍、および10倍をワクチン接種する。ワクチン接種用腫瘍細胞は、まったく遺伝子改変をせずに(wtTRAMP)、またはIL-2/IFNγトランスフェクト細胞として使用する。5×105個、5×106個、および5×107個のTRAMP細胞を用いて皮下注射によりマウスを免疫化する。6つの群には、腫瘍細胞と共に活性なアジュバントとして1×106CFUのBKGを与える。免疫化後1週間目、および続いて6週毎に、血液0.5mlを試料採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色によってTRAMP-C1に特異的な免疫反応を測定する。12週毎に、疾患の進行をモニターするためにCTを実施する。不必要な苦痛を回避するために、影響を受けていない前立腺癌疾患を示すTRAMPマウスは32〜35週齢で屠殺しなければならない。ワクチン接種によって、疾患の進行に変化が観察され得るかどうかを調査するために、第40週目までマウスを観察すべきである。
予備実験6で決定したワクチン接種用腫瘍細胞の投与量は、BKG投与量(予備実験6で決定したBKG投与量の0.1倍、1倍、および10倍)に応じて変動する。予備実験6と同様に、wtTRAMP-C1ならびに遺伝子改変されたIL-2/IFNγ-TRAMP-C1細胞の両方を試験する。免疫化後1週間目、および続いて6週毎に、血液0.5mlの試料を動物から採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色によってTRAMP-C1に特異的な免疫反応を測定する。12週毎に、疾患の進行をモニターするためにCTを実施する。40週目に最終の血液試料採取および安楽死を実施する。
ワクチン接種用腫瘍細胞、すなわち卵白アルブミンを発現する放射線照射された同種異系J558腫瘍細胞(H2Kb)を予備実験1で定義した投与量で用いて、C57BL/6マウス(H2Kb)を免疫化する。これらの動物の一部には、ワクチン接種用腫瘍と共に活性なアジュバントBKG(予備実験3で定義する投与量)を与える。1週間後、血液0.5mlを動物から採取し、かつELISA、細胞内サイトカイン染色、またはテトラマー染色によって卵白アルブミンに特異的な免疫反応を測定する。さらに4週間後、卵白アルブミンを発現するB16腫瘍細胞および腫瘍増殖の通常の対照を予備実験2で決定した投与量に相当する腫瘍細胞の投与量で皮下注射することによって、生きた腫瘍細胞に対する免疫系の反応性を測定する。
実験1で報告する予防的腫瘍免疫化とは対照的に、放射線照射されていない試験腫瘍細胞を予備実験2で特定した投与量を用いて皮下注射することによって、C57BL/6マウス(H2Kb)において腫瘍増殖を発生させる。腫瘍の直径が0.5cmになったら、実験1で説明したワクチン接種スキームを試験する。腫瘍の直径が2cmに達したら、これらの試験を終了する。しかしながら、これらの動物は最長1年間モニターする。存在する免疫学的プロセスを考察するために、4週間毎にマウスから血液0.5mlを試料採取して、実験1で定義したように免疫応答を測定する。
TRAMPマウスは、第6〜7週に初めて上皮内新生物を示し、かつ第15週から前立腺癌の顕著な臨床像を示し始める。このような前立腺癌は、最初は限局しているが、24週目から約10%の動物が転移を示し始め、かつ32〜35週目からは、重度の疾患状態が予想され得る。予防的腫瘍ワクチン接種は、第5週から開始する。アジュバントを併用しないワクチン接種用腫瘍細胞およびアジュバントを併用するワクチン接種用腫瘍細胞の単回注射を使用する。ワクチン接種用腫瘍細胞として、TRAMPマウスに由来する前立腺癌細胞株であるTRAMP-C1細胞を致死的に放射線照射したものを使用する。ワクチン接種用腫瘍細胞は、遺伝子改変をせずに(wtTRAMP)、またはIL-2/IFNγトランスフェクト細胞として使用する。さらに、予備実験で決定した2つの最善の免疫化スキーム(プライムブーストスキームおよび長期スキーム)を試験する。PCa発症の対照として、動物を12週毎にCTに供する。以下の群が定義され得る:
HV3.1 ワクチン接種無(対照群)
HV3.2 ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP-C1細胞)皮下
HV3.3 BKGワクチン(wtTRAMP-C1細胞+BKG)皮下
HV3.4 BCGワクチン(wtTRAMP-C1細胞+BCG)皮下
HV3.5 予備実験5で決定したプライムブーストとして、ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP)
HV3.6 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BKGワクチン(wtTRAMP)
HV3.7 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BCGワクチン(wtTRAMP)
HV3.8 予備実験5で決定した長期免疫化として、ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP)
HV3.9 予備実験5で決定した長期免疫化として、BKGワクチン(wtTRAMP)
HV3.10 予備実験5で決定した長期免疫化として、BCGワクチン(wtTRAMP)
HV3.11 ワクチン接種用腫瘍のみ(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞)皮下
HV3.12 BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞+BKG)皮下
HV3.13 BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞+BCG)皮下
HV3.14 予備実験5で決定したプライムブーストとして、ワクチン接種用腫瘍のみ(TL2/IFNγ-TRAMP)
HV3.15 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV3.16 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV3.17 予備実験5で決定した長期免疫化として、ワクチン接種用腫瘍のみ(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV3.18 予備実験5で決定した長期免疫化として、BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV3.19 予備実験5で決定した長期免疫化として、BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
1:マウスの誕生;第-5週
2:ワクチン接種;時間0(5週齢のマウス)
3:1週間後に血液試料採取
4:7週間後に血液試料採取
5:13週間後に血液試料採取およびCT
6:19週間後に血液試料採取
7:25週間後に血液試料採取およびCT
8:31週間後に血液試料採取
9:37週間後に血液試料採取およびCT
10:40週間後に血液試料採取およびマウスの安楽死
1:マウスの誕生;第-2週
2:ワクチン接種;時間0(初回抗原刺激I)
3:1週間後に血液試料採取
4:2週間後にワクチン接種(初回抗原刺激II)
5:4週間後にワクチン接種(初回抗原刺激III)(6週齢の時点)
6:5週間後に血液試料採取
7:10週間後にワクチン接種(追加免疫ワクチン接種)(12週齢の時点)
8:追加免疫ワクチン接種後1週目に血液試料採取およびCT
9:追加免疫ワクチン接種後7週目に血液試料採取
10:追加免疫ワクチン接種後13週目に血液試料採取およびCT
11:追加免疫ワクチン接種後19週目に血液試料採取
12:追加免疫ワクチン接種後25週目に血液試料採取およびCT
13:追加免疫ワクチン接種後28週目に(40週齢時点)血液試料採取およびマウスの安楽死
1:マウスの誕生;第-2週
2:1回目のワクチン接種;時間0
3:1週間後に血液試料採取
4:6週間後に2回目のワクチン接種(予備実験5で決定したワクチン接種の間隔)
5:1週間後に血液試料採取
6:12*週間後に3回目のワクチン接種
7:1週間後に血液試料採取およびCT
8:18*週間後に4回目のワクチン接種
9:1週間後に血液試料採取
10:24*週間後に5回目のワクチン接種
11:1週間後に血液試料採取およびCT
12:30*週間後に6回目のワクチン接種
13:1週間後に血液試料採取
14:6週間後に血液試料採取
15:40週間後に血液試料採取およびマウスの安楽死
*ワクチン接種の間隔は、予備実験5からの結果に依存する。
すべてのTRAMPマウスは15週齢で前立腺腫瘍を発症し、これは32週目に完全に発達し、これらの動物に臨床的問題を引き起こす。したがって、24週目にこれらの動物を免疫化する。中止判定基準のうちの1つが認識されたら、実験は中止する。最長で、40週間、これらの動物をモニターする。免疫学的プロセスをモニターするために、6週間毎にマウスから血液試料0.5mlを採取し、実験1に関連して説明したように免疫応答を調査し、かつ12週間毎にCTのような画像検査を使用する。実験3に関連して説明したのと同じ腫瘍細胞を使用する。
HV4.1 ワクチン接種無(対照群)
HV4.2 ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP-C1細胞)皮下
HV4.3 BKGワクチン(wtTRAMP-C1細胞+BKG)皮下
HV4.4 BCGワクチン(wtTRAMP-C1細胞+BCG)皮下
HV4.5 予備実験5で決定したプライムブーストとして、ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP)
HV4.6 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BKGワクチン(wtTRAMP)
HV4.7 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BCGワクチン(wtTRAMP)
HV4.8 予備実験5で決定した長期免疫化として、ワクチン接種用腫瘍のみ(wtTRAMP)
HV4.9 予備実験5で決定した長期免疫化として、BKGワクチン(wtTRAMP)
HV4.10 予備実験5で決定した長期免疫化として、BCGワクチン(wtTRAMP)
HV4.11 ワクチン接種用腫瘍のみ(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞)皮下
HV4.12 BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞+BKG)皮下
HV4.13 BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP-C1細胞+BCG)皮下
HV4.14 予備実験5で決定したプライムブーストとして、ワクチン接種用腫瘍のみ(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV4.15 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV4.16 予備実験5で決定したプライムブーストとして、BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV4.17 予備実験5で決定した長期免疫化として、ワクチン接種用腫瘍のみ(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV4.18 予備実験5で決定した長期免疫化として、BKGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
HV4.19 予備実験5で決定した長期免疫化として、BCGワクチン(IL2/IFNγ-TRAMP)
1:マウスの誕生
2:6週間後に血液試料採取
3:12週間後に血液試料採取およびCT
4:18週間後に血液試料採取
5:24週間後にワクチン接種
6:25週間後に血液試料採取およびCT
7:30週間後に血液試料採取
8:36週間後に血液試料採取およびCT
9:40週間後に血液試料採取およびマウスの安楽死
1:マウスの誕生
2:6週間後に血液試料採取
3:12週間後に血液試料採取およびCT
4:18週間後に血液試料採取
5:24週間後にワクチン接種(初回抗原刺激I)
6:25週間後に血液試料採取およびCT
7:26週間後にワクチン接種(初回抗原刺激II)
8:28週間後にワクチン接種(初回抗原刺激III)
9:30週間後に血液試料採取
10:34週間後にワクチン接種(追加免疫ワクチン接種)
11:36週間後に血液試料採取およびCT
12:40週間後に血液試料採取およびマウスの安楽死
1:マウスの誕生
2:6週間後に血液試料採取
3:12週間後に血液試料採取およびCT
4:18週間後に血液試料採取
5:24週間後にワクチン接種(初回抗原刺激I)
6:25週間後に血液試料採取およびCT
7:30週間後にワクチン接種(初回抗原刺激II)
8:31週間後に血液試料採取
9:36週間後にワクチン接種(初回抗原刺激III)
10:37週間後に血液試料採取およびCT
11:42週間後にワクチン接種(初回抗原刺激IV)
12:43週間後に血液試料採取およびマウスの安楽死
ワクチン接種の間隔は、好ましくは、予備実験5の結果に依存する。
前立腺癌の治療に適する組成物は、リステリア・モノサイトゲネスに由来するファゴリソソーム脱出ペプチド(Hly)を発現し、さらにureCを欠損している、BCGを第1の構成要素として含む。このような改変BCGは、本明細書においてrBCG:ΔureC:Hlyとも呼ぶ。この組成物は、遺伝子改変されたLNCaP細胞を第2の構成要素として含み、これらの細胞は組換えインターロイキン-2(IL2)およびインターフェロン-γ(IFNγ)を発現する前立腺癌細胞である。好ましくは、このようなLNCaP細胞は、ほぼ等モルの様式で両方のサイトカインを発現する。この種のLNCaP細胞は、例えば、国際特許出願WO94/18995において記載されている。使用前にそれらの複製能を消失させるために、このような組換え前立腺癌細胞にγ線を照射した。
本実施例では、ヒトサイトメガロウイルスの感染に対する細胞性免疫を誘導するための、アジュバントとしてのBKG、および本明細書において説明するHCMVデンスボディの成功裡な組合せを報告する。より具体的には、短期間内に細胞性免疫を誘導できることを報告する。このようなHCMV免疫の迅速な誘導は、生命を脅かすHCMV感染をかなり頻繁に伴う、骨髄移植を受けている患者において特に重要である。骨髄移植を受けている患者において特に重要である。移植患者の場合、標準的な手法に従ってより長期間に渡ってワクチン接種をするための時間がないため、細胞性免疫を迅速に発生させる必要がある。
抗原:
デンスボディ
投与量:20μg/動物
免疫化スキーム:
D:0/7/21日目
C:0/7日目
B:0日目
アジュバント:
投与量:1×106/動物
免疫化スキーム:0日目
マラリアを治療および予防するための組成物は、第1の構成要素としてrBCG:ΔureC:Hlyおよび第2の構成要素としてマラリア抗原gp190/MSP1を含む。抗原は、ペプチドとして存在し得ること、またはより大型のペプチド、ポリペプチド、もしくはさらにタンパク質の一部分であり得ることが認識される。
Claims (59)
- 第1の構成要素が、ファゴリソソーム脱出ペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む細菌細胞であり;かつ第2の構成要素が、生物学的に活性な作用剤である、第1の構成要素および第2の構成要素を含む組合せであって、該細菌細胞がウレアーゼを欠損しており、該細菌細胞がマイコバクテリウム細胞である、組合せ。
- 細胞がマイコバクテリウム・ボビス(Mycobacterium bovis)細胞である、請求項1記載の組合せ。
- 細菌細胞のウレアーゼのサブユニットをコードしている少なくとも1つの細胞核酸が不活性化される、請求項1〜2のいずれか一項記載の組合せ。
- 少なくとも、細菌ウレアーゼのCサブユニットをコードしている配列が不活性化される、請求項3記載の組合せ。
- ファゴリソソーム脱出ドメインが、リステリアのファゴリソソーム脱出ドメインである、請求項1〜4のいずれか一項記載の組合せ。
- ファゴリソソームドメインが、
a)配列番号1において示されるヌクレオチド211〜1,722を含むヌクレオチド配列;b)a)に由来する配列と同じアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列;および
c)a)またはb)に由来する配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列
を含む群より選択される核酸分子によってコードされる、請求項1〜5のいずれか一項記載の組合せ。 - 細菌細胞が、哺乳動物において免疫応答を誘発することができるペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む、請求項1〜6のいずれか一項記載の組合せ。
- ペプチドまたはポリペプチドが、自己抗原、腫瘍抗原、ウイルス抗原、寄生虫抗原、細菌抗原、およびそれらの免疫原性の断片より選択される、請求項7記載の組合せ。
- ペプチドまたはポリペプチドが、融合ポリペプチドの一部分である、請求項7または8記載の組合せ。
- 融合ポリペプチドが、
a)哺乳動物において免疫応答を誘発することができる、ポリペプチドに由来する少なくとも1つのドメイン、および
b)ファゴリソソーム脱出ドメイン
を含む、請求項9記載の組合せ。 - ポリペプチドが、請求項7記載のポリペプチドまたはその一部分である、請求項10記載の組合せ。
- ファゴリソソーム脱出ドメインが、請求項1〜9のいずれか一項記載のファゴリソソーム脱出ドメインのドメインである、請求項10または11記載の組合せ。
- 細菌細胞が、rBCG:HlyまたはrBCGΔureC:Hlyである、請求項1〜11のいずれか一項記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤が、サイトカインを発現する遺伝子操作された真核細胞である、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- サイトカインが、インターロイキン-2、インターロイキン-4、インターロイキン-12、およびインターフェロン-γを含む群より選択される、請求項14記載の組合せ。
- 細胞が、2種またはそれ以上のサイトカインを共発現する、請求項15記載の組合せ。
- 細胞が、IL-2およびインターフェロン-γを共発現する、請求項16記載の組合せ。
- 細胞が、細胞および/もしくは組成物が投与されるか、または投与される予定の対象に対して自己由来(autologue)である、請求項14〜17のいずれか一項記載の組合せ。
- 細胞が、細胞および/もしくは組成物が投与されるか、または投与される予定の対象に対して同種異系である、請求項14〜17のいずれか一項記載の組合せ。
- 細胞が、非プロフェッショナル抗原提示細胞、プロフェッショナル抗原提示細胞、腫瘍細胞、および樹状細胞を含む群より選択される、請求項14〜19のいずれか一項記載の組合せ。
- 腫瘍細胞が免疫原性の腫瘍であり、かつ該腫瘍細胞が、黒色腫細胞、腎癌細胞、乳房腫瘍細胞、脳腫瘍細胞、前立腺腫瘍細胞、非小細胞肺癌、結腸癌、および頭頸部の扁平上皮腫瘍を含む群より選択される、請求項20記載の組合せ。
- 細胞が、同種異系細胞であり、かつHLAクラスIが一致している、請求項14〜21のいずれか一項記載の組合せ。
- 細胞が、サイトカイン、接着分子、共刺激因子、腫瘍関連抗原、腫瘍特異的抗原、および寄生虫抗原を含む群より選択される別の免疫分子を発現する、請求項14〜22のいずれか一項記載の組合せ。
- 寄生虫抗原が、熱帯熱マラリア原虫(Plasmodium falciparum)のgp190/MSP1タンパク質、または哺乳動物において免疫応答を誘発することができるその断片である、請求項23記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤が、熱帯熱マラリア原虫のgp190/MSP1タンパク質、または哺乳動物において免疫応答を誘発することができるその断片である、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤がヒトサイトメガロウイルスである、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤が、ヒトサイトメガロウイルスによる哺乳動物細胞の感染後に放出される、1つのウイルス粒子または多数のウイルス粒子であり、その際、該粒子は、(a)ウイルスの糖タンパク質が埋め込まれている脂質膜によって取り囲まれており、かつ(b)ウイルスDNAもキャプシドも含まない、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- 粒子が、T細胞抗原pp65(UL83)の1つまたは複数の部分およびpp65ではない1種または複数種のタンパク質の1つもしくは複数の部分を含む融合タンパク質を含む、請求項27記載の組合せ。
- T細胞抗原pp65が、ヒトサイトメガロウイルスの糖タンパク質の1つまたは複数の部分に融合されており、該糖タンパク質は、HCMV糖タンパク質gH、HCMVタンパク質IE1(ppUL123)、およびHCMV糖タンパク質gBを含む群より選択される、請求項28記載の組合せ。
- T細胞抗原が、HCMV以外のヒト病原体の一部分であるタンパク質の1つまたは複数の部分に融合される、請求項28記載の組合せ。
- 病原体が、HIV-1、HBV、HCV、およびインフルエンザを含む群より選択される、請求項30記載の組合せ。
- 粒子が、異なるHCMV株に由来する特定の糖タンパク質の変異体である少なくとも2種の糖タンパク質の一部分を含む、請求項27〜31のいずれか一項記載の組合せ。
- 特定のHCMV糖タンパク質の2種の変異体のうちの一方がHCMV Towne株の変異体であり、かつもう一方が、HCMV Ad169株の変異体である、請求項32記載の組合せ。
- 哺乳動物細胞が、包皮繊維芽細胞である、請求項27〜33のいずれか一項記載の組合せ。
- 粒子がデンスボディ(dense body)である、請求項27〜33のいずれか一項記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤が、HCMVのデンスボディ、または請求項35記載のデンスボディである、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- 生物学的に活性な作用剤が、マイコバクテリウム亜種に由来する抗原である、請求項1〜13のいずれか一項記載の組合せ。
- マイコバクテリウムが、M.ツベルクローシス(M. tuberculosis)、M.ボビス、M.カネッティ(M. canettii)、M.アフリカヌム(M. africanum)、およびM.パラツベルクローシス(M. paratuberculosis)を含む群より選択される、請求項37記載の組合せ。
- 抗原が抗原85である、請求項37および38記載の組合せ。
- 請求項1〜39のいずれか一項記載の組合せおよび任意で薬学的に許容される担体を含む、薬学的組成物。
- 薬剤を製造するための、請求項1〜39のいずれか一項記載の組合せ、請求項40記載の組合せ、またはそのような組合せの各構成要素の使用。
- 薬剤が、癌および感染性疾患を含む群より選択される疾患の治療用および/または予防用である、請求項41記載の使用。
- 癌が、免疫原性の腫瘍であり、かつ、前立腺癌、黒色腫、腎癌、乳房腫瘍、脳腫瘍、非小肺癌、結腸癌、および頭頸部の扁平上皮腫瘍を含む群より選択される、請求項42記載の使用。
- 感染性疾患がマラリアである、請求項42記載の使用。
- 生物学的に活性な作用剤が、マラリア原虫のgp190/MSP1タンパク質、または哺乳動物において免疫応答を誘発することができるその断片である、請求項44記載の使用。
- 感染性疾患がHCMV感染症である、請求項42記載の使用。
- 生物学的に活性な作用剤が、デンスボディである、請求項46記載の使用。
- 感染性疾患が結核である、請求項42記載の使用。
- 生物学的に活性な作用剤が、マイコバクテリウム亜種に由来する抗原である、請求項48記載の使用。
- マイコバクテリウムが、M.ツベルクローシス、M.ボビス、M.カネッティ、M.アフリカヌム、およびM.パラツベルクローシスを含む群より選択される、請求項49記載の使用。
- 抗原が抗原85である、請求項49または50記載の使用。
- 治療ワクチンおよび/または予防ワクチンを製造するための、請求項1〜39のいずれか一項記載の組合せ、またはそのような組合せの各構成要素の使用。
- 疾患に罹患しており、かつそのような治療を必要としている患者を治療するための方法に使用するための、請求項1〜39のいずれか一項記載の組合せ。
- 疾患に罹患しており、かつそのような治療を必要としている患者を治療するための方法に使用するための、請求項40に項記載の薬学的組成物。
- 請求項40記載の薬学的組成物を製造するための方法であって、以下の段階を含む方法:
ファゴリソソーム脱出ペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む細菌細胞を第1の構成要素として提供する段階;
生物学的に活性な作用剤を第2の構成要素として提供する段階;ならびに
第1の構成要素および第2の構成要素を薬学的組成物に製剤化する段階。 - 請求項40記載の薬学的組成物を製造するための方法であって、以下の段階を含む方法:
ファゴリソソーム脱出ペプチドまたはポリペプチドをコードする少なくとも1つの組換え核酸分子を含む細菌細胞を第1の構成要素として提供する段階;
生物学的に活性な作用剤を第2の構成要素として提供する段階;ならびに
第1の構成要素および第2の構成要素を別々に製剤化する段階。 - 製剤化された第1の構成要素および製剤化された第2の構成要素が単一のパッケージ中に包装される、請求項56記載の方法。
- 製剤化された第1の構成要素および製剤化された第2の構成要素が別々のパッケージ中に包装される、請求項56記載の方法。
- パッケージが、単回投薬単位であるか、または複数の単回投薬単位を含む、請求項57および58のいずれか記載の方法。
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